Identification of genes that enhance cellulose protein production in yeast
- 作者
- Takao Kitagawa, Katsunori Kohda, Kenro Tokuhiro, Hisashi Hoshida, Rinji Akada, Haruo Takahashi, Takao Imaeda
- 单位
- Department of Applied Molecular Bioscience, Yamaguchi University Graduate School of Medicine; Biotechnology Laboratory, Toyota Central R&D Labs, Inc.
- 杂志
- Journal of Biotechnology(2010)
- DOI
- 10.1016/j.jbiotec.2010.12.002
- 所属领域
- 代谢工程
- 关键词
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解决的核心问题
酿酒酵母无法高效分泌异源纤维素酶蛋白,导致纤维素乙醇生产中所需糖化酶用量大、成本高,且缺乏系统鉴定增强纤维素酶蛋白生产的关键基因。
研究策略
利用酿酒酵母全基因组纯合二倍体缺失株文库,系统转化热纤梭菌内切葡聚糖酶基因Ctcel8A,基于CMC水解圈进行高通量筛选,随后通过染色体整合验证排除质粒拷贝数和启动子特异性效应,并进一步测试对多种纤维素酶及多重基因缺失的叠加效应。
核心内容
为提升酿酒酵母异源纤维素酶蛋白的分泌效率,该研究利用全基因组纯合二倍体缺失株文库进行系统筛选。将热纤梭菌内切葡聚糖酶基因Ctcel8A转化至5197株缺失株,通过CMC水解圈高通量筛选并结合染色体整合验证,共鉴定出55个能增强内切葡聚糖酶活性的基因缺失株,其中vps3Δ和vps16Δ效果最强,活性约为野生型的3倍。进一步测试表明,vps3Δ缺失对来自不同菌种和糖苷水解酶家族的内切葡聚糖酶均有增强作用,且能提升部分菌株的β-葡萄糖苷酶分泌和细胞表面活性。通过组合缺失构建出rav1Δvps3Δ双缺失株,内切葡聚糖酶活性达到野生型的3.7倍,显著优于单基因缺失。结果揭示液泡/内体转运相关基因在纤维素酶蛋白分泌中起关键调控作用,为通过基因工程改造酵母菌株、降低纤维素乙醇生产中糖化酶成本提供了新的改造靶点和可行的筛选策略。
创新点
1. 首次采用酵母基因缺失株文库全基因组筛选增强纤维素酶蛋白生产的基因;2. 鉴定出55个相关基因缺失株,其中VPS3和VPS16缺失效果最强;3. 证明VPS3缺失对多种来源和糖苷水解酶家族的内切葡聚糖酶及β-葡萄糖苷酶均有增强作用;4. 构建出rav1Δvps3Δ双缺失株,活性进一步提升至野生型的3.7倍。
研究对象(40)
| 底盘细胞 | 代谢通路 | 基因 | 蛋白 | 功能 | 说明 |
|---|---|---|---|---|---|
| Saccharomyces cerevisiae | 纤维素降解 | Ctcel8A (cel8A) | Cel8A内切葡聚糖酶 | 催化 | 来自热纤梭菌的糖苷水解酶家族8内切葡聚糖酶,作为主要筛选报告酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 纤维素降解 | Cccel5A (cel5A) | Cel5A内切葡聚糖酶 | 催化 | 来自解纤维素梭菌,糖苷水解酶家族5 |
| Saccharomyces cerevisiae | 纤维素降解 | Cccel9M (cel9M) | Cel9M内切葡聚糖酶 | 催化 | 来自解纤维素梭菌,糖苷水解酶家族9 |
| Saccharomyces cerevisiae | 纤维素降解 | Pccel12A (cel12A) | Cel12A内切葡聚糖酶 | 催化 | 来自黄孢原毛平革菌,糖苷水解酶家族12 |
| Saccharomyces cerevisiae | 纤维素降解/β-葡萄糖苷水解 | AaBGL (bgl1) | β-葡萄糖苷酶 | 催化 | 来自棘孢曲霉,用于β-葡萄糖苷酶活性检测 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | MON2 | Mon2p | 转运 | 参与内吞和液泡完整性 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | RAV1 | Rav1p | 转运 | RAVE复合体亚基,参与V-ATP酶组装;与VPS3双缺失协同增强 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | SNF7 | Snf7p | 转运 | ESCRT-III复合体亚基 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | SNF8 | Snf8p | 转运 | ESCRT-II复合体组分 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VMA7 | Vma7p | 转运 | V-ATPase V1外周膜结构域F亚基 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS3 | Vps3p | 转运 | CORVET拴系复合体组分,缺失对多种纤维素酶均有增强 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS4 | Vps4p | 转运 | AAA-ATPase,参与多泡体蛋白分选 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS16 | Vps16p | 转运 | class C VPS复合体亚基,缺失活性与vps3Δ相当 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS25 | Vps25p | 转运 | ESCRT-II复合体组分 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS27 | Vps27p | 转运 | 内体蛋白,与Hse1p形成复合体 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS28 | Vps28p | 转运 | ESCRT-I复合体组分 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS36 | Vps36p | 转运 | ESCRT-II复合体组分 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS41 | Vps41p | 转运 | HOPS复合体亚基 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | VPS45 | Vps45p | 转运 | Sec1p/Munc-18家族蛋白 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | YDR065W | Ydr065wp | 转运 | 功能未知,液泡酸化所需 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | YKL118W | Ykl118wp | 转运 | 疑似的开放阅读框,与VPH2部分重叠 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | YOR331C | Yor331cp | 转运 | 疑似的开放阅读框,与VMA4部分重叠 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内体/液泡运输 | YPT7 | Ypt7p | 转运 | GTPase,参与液泡同型融合 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内质网/高尔基体功能 | ARV1 | Arv1p | 转运 | 参与GPI锚定蛋白运输 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内质网/高尔基体功能 | CSG2 | Csg2p | 催化 | 参与肌醇磷酰神经酰胺甘露糖基化 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内质网/高尔基体功能 | FAR8 | Far8p | 调控 | 参与信息素诱导的G1期停滞,定位于内质网 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内质网/高尔基体功能 | PER1 | Per1p | 催化 | GPI-磷脂酶A2,重塑GPI锚 |
| Saccharomyces cerevisiae | 内质网/高尔基体功能 | SAC1 | Sac1p | 催化 | 磷脂酰肌醇磷酸磷酸酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 磷脂/甾醇合成 | CHO2 | Cho2p | 催化 | 磷脂酰乙醇胺甲基转移酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 磷脂/甾醇合成 | ERG3 | Erg3p | 催化 | C-5甾醇去饱和酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 磷脂/甾醇合成 | ERG6 | Erg6p | 催化 | Δ(24)-甾醇C-甲基转移酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 磷脂/甾醇合成 | OPI3 | Opi3p | 催化 | 磷脂甲基转移酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 转录调控 | ADA2 | Ada2p | 调控 | ADA和SAGA转录适配器复合体共激活因子 |
| Saccharomyces cerevisiae | 转录调控 | GCN5 | Gcn5p | 调控 | 组蛋白乙酰转移酶 |
| Saccharomyces cerevisiae | 转录调控 | HMO1 | Hmo1p | 调控 | 高迁移率族DNA结合蛋白 |
| Saccharomyces cerevisiae | 转录调控 | SFP1 | Sfp1p | 调控 | 控制核糖体生物发生基因表达的转录因子 |
| Saccharomyces cerevisiae | 翻译/核糖体生物发生 | BUD23 | Bud23p | 催化 | 甲基转移酶,甲基化18S rRNA G1575 |
| Saccharomyces cerevisiae | 翻译/核糖体生物发生 | RPL13B | Rpl13Bp | 调控 | 60S核糖体大亚基蛋白 |
| Saccharomyces cerevisiae | 翻译/核糖体生物发生 | RPL19B | Rpl19Bp | 调控 | 60S核糖体大亚基蛋白 |
| Saccharomyces cerevisiae | 翻译/核糖体生物发生 | RPL36A | Rpl36Ap | 调控 | 60S核糖体大亚基蛋白 |
关键发现
- 通过将热纤梭菌内切葡聚糖酶基因Ctcel8A转化至5197株酵母纯合二倍体缺失株,经CMC平板活性筛选和染色体整合验证,共鉴定出55个增强内切葡聚糖酶活性的缺失株。其中vps3Δ和vps16Δ活性最高,约比野生型高3倍
- 其余8株也显示1.5-3倍增强。vps3Δ株对4种不同糖苷水解酶家族的内切葡聚糖酶(Ctcel8A、Cccel5A、Cccel9M、Pccel12A)均增强。在所测9株中,gcn5Δ、opi3Δ、per1Δ、vma7Δ、vps16Δ的上清β-葡萄糖苷酶活性增强1.2-1.4倍,所有株细胞表面β-葡萄糖苷酶活性增强1.3-2.3倍。双缺失株rav1Δvps3Δ的内切葡聚糖酶活性达野生型的3.7倍,rav1Δfar8Δ为3.1倍,单个far8Δ、rav1Δ、vps3Δ分别为1.7、2.1和2.9倍
- 三重缺失(rav1Δvps3Δgcn5Δ或rav1Δvps3Δvps16Δ)活性下降。
研究结论
利用酵母缺失株文库全基因组筛选,成功鉴定出55个可增强异源纤维素酶蛋白生产的基因缺失株,其中液泡/内体转运相关基因尤其重要,VPS3被视为关键基因。通过组合缺失构建出活性更高的rav1Δvps3Δ双缺失株。该方法为通过基因工程提高酵母纤维素酶分泌和促进CBP生物乙醇生产提供了新靶点。