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Identification of genes that enhance cellulose protein production in yeast

作者
Takao Kitagawa, Katsunori Kohda, Kenro Tokuhiro, Hisashi Hoshida, Rinji Akada, Haruo Takahashi, Takao Imaeda
单位
Department of Applied Molecular Bioscience, Yamaguchi University Graduate School of Medicine; Biotechnology Laboratory, Toyota Central R&D Labs, Inc.
杂志
Journal of Biotechnology(2010)
DOI
10.1016/j.jbiotec.2010.12.002
所属领域
代谢工程
关键词
CellulaseEndoglucanaseSaccharomyces cerevisiaeYeast gene deletion strain collectionβ-Glucosidase
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解决的核心问题

酿酒酵母无法高效分泌异源纤维素酶蛋白,导致纤维素乙醇生产中所需糖化酶用量大、成本高,且缺乏系统鉴定增强纤维素酶蛋白生产的关键基因。

研究策略

利用酿酒酵母全基因组纯合二倍体缺失株文库,系统转化热纤梭菌内切葡聚糖酶基因Ctcel8A,基于CMC水解圈进行高通量筛选,随后通过染色体整合验证排除质粒拷贝数和启动子特异性效应,并进一步测试对多种纤维素酶及多重基因缺失的叠加效应。

研究路线图

100%
研究问题:酵母无法高效分泌异源纤维素酶
策略:全基因组缺失株文库筛选增强基因
改造①:转化Ctcel8A至5197株缺失株
改造②:CMC水解圈高通量筛选
改造③:染色体整合验证排除质粒效应
改造④:构建多重基因组合缺失株
结果:鉴定55个增强缺失株,VPS3/VPS16效果最佳
结论:VPS3为关键靶点,rav1Δvps3Δ双缺失活性达3.7倍,为CBP乙醇生产提供新策略
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核心内容

为提升酿酒酵母异源纤维素酶蛋白的分泌效率,该研究利用全基因组纯合二倍体缺失株文库进行系统筛选。将热纤梭菌内切葡聚糖酶基因Ctcel8A转化至5197株缺失株,通过CMC水解圈高通量筛选并结合染色体整合验证,共鉴定出55个能增强内切葡聚糖酶活性的基因缺失株,其中vps3Δ和vps16Δ效果最强,活性约为野生型的3倍。进一步测试表明,vps3Δ缺失对来自不同菌种和糖苷水解酶家族的内切葡聚糖酶均有增强作用,且能提升部分菌株的β-葡萄糖苷酶分泌和细胞表面活性。通过组合缺失构建出rav1Δvps3Δ双缺失株,内切葡聚糖酶活性达到野生型的3.7倍,显著优于单基因缺失。结果揭示液泡/内体转运相关基因在纤维素酶蛋白分泌中起关键调控作用,为通过基因工程改造酵母菌株、降低纤维素乙醇生产中糖化酶成本提供了新的改造靶点和可行的筛选策略。

创新点

1. 首次采用酵母基因缺失株文库全基因组筛选增强纤维素酶蛋白生产的基因;2. 鉴定出55个相关基因缺失株,其中VPS3和VPS16缺失效果最强;3. 证明VPS3缺失对多种来源和糖苷水解酶家族的内切葡聚糖酶及β-葡萄糖苷酶均有增强作用;4. 构建出rav1Δvps3Δ双缺失株,活性进一步提升至野生型的3.7倍。

研究对象(40)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Saccharomyces cerevisiae 纤维素降解 Ctcel8A (cel8A) Cel8A内切葡聚糖酶 催化 来自热纤梭菌的糖苷水解酶家族8内切葡聚糖酶,作为主要筛选报告酶
Saccharomyces cerevisiae 纤维素降解 Cccel5A (cel5A) Cel5A内切葡聚糖酶 催化 来自解纤维素梭菌,糖苷水解酶家族5
Saccharomyces cerevisiae 纤维素降解 Cccel9M (cel9M) Cel9M内切葡聚糖酶 催化 来自解纤维素梭菌,糖苷水解酶家族9
Saccharomyces cerevisiae 纤维素降解 Pccel12A (cel12A) Cel12A内切葡聚糖酶 催化 来自黄孢原毛平革菌,糖苷水解酶家族12
Saccharomyces cerevisiae 纤维素降解/β-葡萄糖苷水解 AaBGL (bgl1) β-葡萄糖苷酶 催化 来自棘孢曲霉,用于β-葡萄糖苷酶活性检测
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 MON2 Mon2p 转运 参与内吞和液泡完整性
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 RAV1 Rav1p 转运 RAVE复合体亚基,参与V-ATP酶组装;与VPS3双缺失协同增强
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 SNF7 Snf7p 转运 ESCRT-III复合体亚基
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 SNF8 Snf8p 转运 ESCRT-II复合体组分
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VMA7 Vma7p 转运 V-ATPase V1外周膜结构域F亚基
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS3 Vps3p 转运 CORVET拴系复合体组分,缺失对多种纤维素酶均有增强
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS4 Vps4p 转运 AAA-ATPase,参与多泡体蛋白分选
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS16 Vps16p 转运 class C VPS复合体亚基,缺失活性与vps3Δ相当
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS25 Vps25p 转运 ESCRT-II复合体组分
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS27 Vps27p 转运 内体蛋白,与Hse1p形成复合体
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS28 Vps28p 转运 ESCRT-I复合体组分
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS36 Vps36p 转运 ESCRT-II复合体组分
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS41 Vps41p 转运 HOPS复合体亚基
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 VPS45 Vps45p 转运 Sec1p/Munc-18家族蛋白
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 YDR065W Ydr065wp 转运 功能未知,液泡酸化所需
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 YKL118W Ykl118wp 转运 疑似的开放阅读框,与VPH2部分重叠
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 YOR331C Yor331cp 转运 疑似的开放阅读框,与VMA4部分重叠
Saccharomyces cerevisiae 内体/液泡运输 YPT7 Ypt7p 转运 GTPase,参与液泡同型融合
Saccharomyces cerevisiae 内质网/高尔基体功能 ARV1 Arv1p 转运 参与GPI锚定蛋白运输
Saccharomyces cerevisiae 内质网/高尔基体功能 CSG2 Csg2p 催化 参与肌醇磷酰神经酰胺甘露糖基化
Saccharomyces cerevisiae 内质网/高尔基体功能 FAR8 Far8p 调控 参与信息素诱导的G1期停滞,定位于内质网
Saccharomyces cerevisiae 内质网/高尔基体功能 PER1 Per1p 催化 GPI-磷脂酶A2,重塑GPI锚
Saccharomyces cerevisiae 内质网/高尔基体功能 SAC1 Sac1p 催化 磷脂酰肌醇磷酸磷酸酶
Saccharomyces cerevisiae 磷脂/甾醇合成 CHO2 Cho2p 催化 磷脂酰乙醇胺甲基转移酶
Saccharomyces cerevisiae 磷脂/甾醇合成 ERG3 Erg3p 催化 C-5甾醇去饱和酶
Saccharomyces cerevisiae 磷脂/甾醇合成 ERG6 Erg6p 催化 Δ(24)-甾醇C-甲基转移酶
Saccharomyces cerevisiae 磷脂/甾醇合成 OPI3 Opi3p 催化 磷脂甲基转移酶
Saccharomyces cerevisiae 转录调控 ADA2 Ada2p 调控 ADA和SAGA转录适配器复合体共激活因子
Saccharomyces cerevisiae 转录调控 GCN5 Gcn5p 调控 组蛋白乙酰转移酶
Saccharomyces cerevisiae 转录调控 HMO1 Hmo1p 调控 高迁移率族DNA结合蛋白
Saccharomyces cerevisiae 转录调控 SFP1 Sfp1p 调控 控制核糖体生物发生基因表达的转录因子
Saccharomyces cerevisiae 翻译/核糖体生物发生 BUD23 Bud23p 催化 甲基转移酶,甲基化18S rRNA G1575
Saccharomyces cerevisiae 翻译/核糖体生物发生 RPL13B Rpl13Bp 调控 60S核糖体大亚基蛋白
Saccharomyces cerevisiae 翻译/核糖体生物发生 RPL19B Rpl19Bp 调控 60S核糖体大亚基蛋白
Saccharomyces cerevisiae 翻译/核糖体生物发生 RPL36A Rpl36Ap 调控 60S核糖体大亚基蛋白

关键发现

  1. 通过将热纤梭菌内切葡聚糖酶基因Ctcel8A转化至5197株酵母纯合二倍体缺失株,经CMC平板活性筛选和染色体整合验证,共鉴定出55个增强内切葡聚糖酶活性的缺失株。其中vps3Δ和vps16Δ活性最高,约比野生型高3倍
  2. 其余8株也显示1.5-3倍增强。vps3Δ株对4种不同糖苷水解酶家族的内切葡聚糖酶(Ctcel8A、Cccel5A、Cccel9M、Pccel12A)均增强。在所测9株中,gcn5Δ、opi3Δ、per1Δ、vma7Δ、vps16Δ的上清β-葡萄糖苷酶活性增强1.2-1.4倍,所有株细胞表面β-葡萄糖苷酶活性增强1.3-2.3倍。双缺失株rav1Δvps3Δ的内切葡聚糖酶活性达野生型的3.7倍,rav1Δfar8Δ为3.1倍,单个far8Δ、rav1Δ、vps3Δ分别为1.7、2.1和2.9倍
  3. 三重缺失(rav1Δvps3Δgcn5Δ或rav1Δvps3Δvps16Δ)活性下降。

研究结论

利用酵母缺失株文库全基因组筛选,成功鉴定出55个可增强异源纤维素酶蛋白生产的基因缺失株,其中液泡/内体转运相关基因尤其重要,VPS3被视为关键基因。通过组合缺失构建出活性更高的rav1Δvps3Δ双缺失株。该方法为通过基因工程提高酵母纤维素酶分泌和促进CBP生物乙醇生产提供了新靶点。