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Efficient yeast surface-display of novel complex synthetic cellulosomes

作者
Hongting Tang, Jiajing Wang, Shenghuan Wang, Yu Shen, Dina Petranovic, Jin Hou, Xiaoming Bao
单位
State Key Laboratory of Microbial Technology, Shandong University; Shandong Provincial Key Laboratory of Microbial Engineering, Qi Lu University of Technology; Department of Biology and Biological Engineering, Chalmers University of Technology
杂志
Microbial Cell Factories(2018)
DOI
10.1186/s12934-018-0971-2
所属领域
代谢工程
关键词
乙醇二硫键合成纤维小体整合生物加工酵母表面展示
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解决的核心问题

酵母表面展示纤维小体在整合生物加工中面临支架蛋白展示水平低、纤维素酶自组装效率低、纤维素酶活性不足等问题,限制了纤维素直接转化为乙醇的效率。

研究策略

利用酿酒酵母内源a-凝集素亚基Aga1p(重复N端片段tAga1)与Aga2p之间的二硫键相互作用,作为新型cohesin-dockerin蛋白对,构建合成支架蛋白ScafAGA3/ScafAGA5并与传统支架蛋白ScafCipA3组合成双支架复合纤维小体,同时通过连接肽优化和分泌途径工程提高纤维素酶活性,实现纤维素直接发酵产乙醇。

研究路线图

100%
核心问题:酵母表面展示纤维小体效率低
策略:Aga1-Aga2二硫键组装系统
关键改造:构建ScafAGA3/5支架
关键改造:连接肽优化与分泌途径工程
结果:支架展示效率提升41.3%
结果:酶组装效率显著提高
结果:乙醇产量达1.52 g/L
结论:新型组装系统成功应用
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核心内容

本研究利用酿酒酵母内源α-凝集素系统中Aga1p(tAga1重复片段)与Aga2p之间的二硫键相互作用,构建了新型cohesin-dockerin替代蛋白对,用于酵母表面展示合成纤维小体。研究设计了含三个或五个tAga1重复的支架蛋白ScafAGA3/ScafAGA5,并与传统CipA3支架组合成双支架复合体系,同时结合连接肽优化和分泌途径工程提升纤维素酶活性。结果显示,ScafAGA3展示阳性细胞比例为54.6%,较ScafCipA3的38.6%提高41.3%;二硫键组装效率显著高于cohesin-dockerin系统,例如Te-aCBH1组装效率达6.39%,而Te-dCBH1仅为1.80%。含ScafAGA3的菌株从磷酸膨胀纤维素产乙醇0.89 g/L,为ScafCipA3组装菌株的3倍;优化后双支架体系进一步将乙醇产量提升至1.52 g/L。此外,过表达SNC2p使PYD1-L-dCBH1胞外活性提高45.1%。该研究首次实现基于二硫键的复杂多组分纤维小体组装,显著提高了支架展示效率和酶组装效率,为酵母协同降解纤维素并生产乙醇提供了新策略。

创新点

首次通过二硫键构建复杂多组分纤维小体组装系统;利用酵母内源Aga1p-Aga2p蛋白对替代细菌cohesin-dockerin,显著提高支架展示效率和酶组装效率;设计双支架系统(ScafAGA和ScafCipA3)实现复杂纤维小体自组装;结合连接肽优化和分泌途径工程提高纤维素酶分泌和活性。

研究对象(12)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 AGA1 Aga1p(tAga1p片段) 区室化 细胞壁锚定蛋白,通过二硫键与Aga2p结合,作为合成支架的重复单元
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 AGA2 Aga2p 区室化 与tAga1p形成二硫键,作为dockerin单元融合纤维素酶或支架蛋白
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 人工合成scaffoldin基因 ScafAGA3(含三个tAga1重复和CBD) 区室化 新型锚定支架蛋白,展示效率高于传统ScafCipA3
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 人工合成scaffoldin基因 ScafAGA5(含五个tAga1重复和CBD) 区室化 增加tAga1重复数,展示阳性率55.6%
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 cipA(来自Clostridium thermocellum) ScafCipA3 区室化 传统支架蛋白,含三个cohesin和CBD,与dockerin非共价结合
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 SED1 Sed1p 区室化 用于验证tAga1p功能的锚定蛋白
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 bgl1(来自Saccharomyces fibuligera) Sf-BGL1 催化 β-葡萄糖苷酶,融合Aga2p或dockerin用于组装
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 cbh1(来自Talaromyces emersonii) Te-CBH1 催化 外切葡聚糖酶,活性为三种外切酶中最高
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 纤维素降解与乙醇发酵 celA(来自Clostridium thermocellum) Ct-CelA 催化 内切葡聚糖酶,活性为三种内切酶中最高
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 分泌途径 PDI1 Pdi1p 调控 二硫键异构酶,过表达提高Ct-CelA活性17%
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 分泌途径 SSO1 Sso1p 转运 t-SNARE蛋白,过表达提高Tr-L-dBGL1活性19.8%
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-5B 分泌途径 SNC2 Snc2p 转运 v-SNARE蛋白,过表达提高PYD1-L-dCBH1活性45.1%

关键发现

  1. ScafAGA3展示阳性细胞比例为54.6%,较ScafCipA3的38.6%提高41.3%;ScafAGA5展示阳性比例为55.6%;通过二硫键组装效率显著高于cohesin-dockerin:Te-aCBH1
  2. 39% vs Te-dCBH1
  3. 80%,Ct-aCelA
  4. 88% vs Ct-dCelA
  5. 58%,Sf-aBGL1
  6. 90% vs Sf-dBGL1
  7. 58%;含ScafAGA3组装菌株从PASC产乙醇0.89 g/L,为ScafCipA3组装菌株的3倍;优化后双支架复合纤维小体(ScafAGA5+ScafCipA3)产乙醇0.87 g/L,较未优化提高73%;调整酶比例后乙醇产量达1.52 g/L;来自T. reesei CBH1和C. cellulovorans EngB的连接肽使Sf-dBGL1活性分别提高2.2和2.4倍,合成连接肽使Te-dCBH1活性提高2.1倍;过表达Sso1p使Tr-L-dBGL1胞外活性提高19.8%,过表达SNC2p使PYD1-L-dCBH1胞外活性提高45.1%。

研究结论

本研究首次开发了基于二硫键的复杂多组分组装系统,应用于合成纤维小体构建,显著提高了支架展示效率和纤维素酶组装效率,为酵母表达协同酶系和纤维乙醇生产提供了新策略。