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The bHLH transcription factor BIS1 controls the iridoid branch of the monoterpenoid indole alkaloid pathway in Catharanthus roseus

作者
Alex Van Moerkercke, Priscille Steensma, Fabian Schweizer, Jacob Pollier, Ivo Gariboldi, Richard Payne, Robin Vanden Bossche, Karel Miettinen, Javiera Espoz, Purin Candra Purnama, Franziska Kellner, Tuulikki Seppänen-Laakso, Sarah E. O'Connor, Heiko Rischer, Johan Memelink, Alain Goossens
单位
Department of Plant Systems Biology, Flanders Institute for Biotechnology (VIB), 9052 Gent, Belgium; Department of Plant Biotechnology and Bioinformatics, Ghent University, 9052 Gent, Belgium; Institute of Biology, Leiden University, 2300 RA Leiden, The Netherlands; Department of Biological Chemistry, John Innes Centre, Norwich NR4 7UH, United Kingdom; VTT Technical Research Centre of Finland Ltd., FIN-02044 VTT, Espoo, Finland
杂志
PNAS(2015)
DOI
10.1073/pnas.1504951112
所属领域
代谢工程
关键词
Catharanthus roseusMadagascar periwinklebasic helix loop helixiridoidsjasmonate
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解决的核心问题

长春花中单萜吲哚生物碱(MIA)途径的iridoid分支缺乏已知的转录调控因子,该分支是MIA合成的限速步骤,而已知调控因子ORCA3不调控该分支。

研究策略

通过转录组共表达分析和功能筛选,在长春花中鉴定受茉莉酸调控的bHLH转录因子BIS1,验证其对iridoid基因启动子的反式激活作用,并通过稳定过表达和沉默实验评估其对MIA产量的影响。

研究路线图

100%
研究问题:MIA途径
iridoid分支缺乏
转录调控因子
策略:转录组共表达
分析+功能筛选
鉴定JA调控bHLH
关键改造:克隆BIS1
验证其反式激活
iridoid启动子能力
改造结果(细胞):
BIS1过表达使木犀草酸
马钱苷等MIA积累
结论:BIS1是iridoid
分支特异性激活因子
与ORCA3互补
对照:烟草原生质体
反式激活验证(95.3倍)
vs ORCA3(1.7倍)
补充验证:毛状根
BIS1沉默显著降低
MIA积累
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核心内容

长春花单萜吲哚生物碱(MIA)合成途径中,iridoid分支是限速步骤,且缺乏已知的转录调控因子。本研究通过转录组共表达分析,鉴定出一个受茉莉酸调控的bHLH转录因子BIS1。功能实验表明,BIS1能特异性反式激活iridoid分支基因启动子,在烟草原生质体中将pG8O启动子激活95.3倍,而ORCA3和MYC2仅分别激活1.7倍和1.1倍;对大多数iridoid启动子的激活幅度达31至95倍,显著强于ORCA3。在稳定过表达BIS1的长春花悬浮细胞系中,木犀草酸、马钱苷、长春质碱、蛇根碱、他波宁等MIA产物积累至对照细胞不可检测的水平,且无需外源前体或茉莉酸诱导。但在毛状根中过表达BIS1虽上调iridoid和MEP途径基因,MIA总量未增加,原因是ORCA3靶基因(如LAMT、SLS、TDC、SGD)表达下调;沉默BIS1则导致MIA积累显著降低。这表明BIS1是iridoid分支特异性的转录激活因子,与ORCA3在MIA途径中功能互补,为通过代谢工程提高长春花细胞培养中高价值MIA的可持续生产提供了新工具。

创新点

鉴定出一个新的bHLH转录因子BIS1,它特异性激活iridoid分支基因(上游至木犀草酸),与ORCA3互补;过表达BIS1足以在长春花悬浮细胞中提高MIA产量,无需外源前体或茉莉酸诱导。

研究对象(18)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Catharanthus roseus MIA生物合成(iridoid分支) BIS1 bHLH转录因子BIS1 调控 茉莉酸诱导的bHLH转录因子,特异性激活iridoid分支基因(如G8O,GES,IS等)及MEP途径基因
Catharanthus roseus MIA生物合成(indole分支) ORCA3 AP2/ERF转录因子ORCA3 调控 已知调控STR、TDC及下游MIA基因,不激活iridoid上游基因
Catharanthus roseus 茉莉酸信号传导 MYC2 bHLH转录因子MYC2 调控 茉莉酸信号通路核心调控因子,调控ORCA3表达,但对iridoid启动子无显著激活
Catharanthus roseus iridoid生物合成 G8O 香叶醇-8-氧化酶 催化 催化geraniol向8-hydroxygeraniol转化,BIS1直接靶标
Catharanthus roseus iridoid生物合成 GES 香叶醇合酶 催化 催化GPP生成geraniol,BIS1直接靶标
Catharanthus roseus iridoid生物合成 8HGO 8-羟基香叶醇氧化酶 催化 催化8-hydroxygeraniol氧化,BIS1直接靶标
Catharanthus roseus iridoid生物合成 IS 环烯醚萜合酶 催化 催化8-oxogeranial环化形成iridodial,BIS1直接靶标
Catharanthus roseus iridoid生物合成 IO 环烯醚萜氧化酶 催化 催化iridodial氧化,BIS1未显著激活其启动子
Catharanthus roseus iridoid生物合成 7DLGT 7-脱氧马钱苷酸葡萄糖基转移酶 催化 催化7-deoxyloganetic acid糖基化,BIS1直接靶标
Catharanthus roseus iridoid生物合成 7DLH 7-脱氧马钱苷酸羟化酶 催化 催化7-deoxyloganetin hydroxylation,BIS1直接靶标
Catharanthus roseus iridoid生物合成 LAMT 马钱苷酸O-甲基转移酶 催化 位于iridoid分支末端,不受BIS1直接激活,但在BIS1过表达细胞中上调
Catharanthus roseus MIA生物合成 SLS 马钱苷合酶 催化 催化secologanin形成,ORCA3靶基因
Catharanthus roseus MIA生物合成 STR 异胡豆苷合酶 催化 催化secologanin与tryptamine缩合形成strictosidine,ORCA3靶基因
Catharanthus roseus MIA生物合成 TDC 色氨酸脱羧酶 催化 催化tryptophan脱羧形成tryptamine,ORCA3靶基因
Catharanthus roseus MEP途径 DXR 1-脱氧-D-木酮糖-5-磷酸还原异构酶 催化 MEP途径关键酶,BIS1过表达时上调,提供IPP前体
Catharanthus roseus MEP途径 HDS (E)-4-羟基-3-甲基-丁-2-烯基焦磷酸合酶 催化 MEP途径酶,BIS1过表达时上调
Catharanthus roseus MEP途径 MECS 2-C-甲基-D-赤藓醇-2,4-环焦磷酸合酶 催化 MEP途径酶,BIS1过表达时上调
Catharanthus roseus MEP途径 GPP synthase small subunit 香叶基二磷酸合酶小亚基 催化 BIS1过表达时上调,增加GPP供应

关键发现

  1. BIS1在烟草原生质体中将pG8O反式激活95.3倍,而ORCA3和MYC2仅激活1.7倍和1.1倍
  2. BIS1可将大多数iridoid启动子激活31-95倍,而ORCA3仅微弱激活(pIS为4.9倍,pSTR1为24.7倍)。在稳定过表达BIS1的长春花MP183L悬浮细胞系中,木犀草酸、马钱苷、长春质碱、蛇根碱、他波宁等MIA积累到对照细胞不可检测的水平
  3. 同时MEP途径基因和iridoid基因上游转录上调。在毛状根中BIS1过表达上调iridoid和MEP基因,但MIA积累未增加,原因是ORCA3靶基因(如LAMT、SLS、TDC、SGD)表达下调。沉默BIS1导致毛状根中MIA积累显著降低。

研究结论

BIS1是iridoid分支的特异性转录激活因子,与ORCA3互补调控MIA途径,可作为代谢工程工具提高长春花细胞培养中高价值MIA的可持续生产。