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CRISPR/Cas9-mediated editing of carotenoid biosynthesis genes alters carotenoid concentrations in kiwifruit

作者
Xiaoyan Luo, Ying Dou, Yuxuan Lang, Huamei Zhao, Xinling Liu, Xiaoli Zhang, Yuxing Li, Dong Liang, Hui Xia
DOI
10.1186/s12870-025-07112-6
所属领域
代谢工程
关键词
CRISPR/Cas9Genetic transformationKiwifruitPhytoene desaturase (PDS)ζ-carotene desaturase (ZDS)
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解决的核心问题

猕猴桃等木本植物遗传转化效率低、耗时长,限制了CRISPR/Cas9基因编辑技术的应用,进而影响基因功能研究和遗传改良。

研究策略

以猕猴桃'红阳'叶柄为外植体,优化激素浓度和潮霉素筛选浓度,建立快速高效的农杆菌介导遗传转化体系;利用CRISPR/Cas9和PTG/Cas9载体靶向编辑类胡萝卜素合成基因AcPDS和AcZDS,通过表型观察和测序分析突变,并HPLC测定类胡萝卜素含量。

研究路线图

100%
研究问题:猕猴桃遗传转化效率低、周期长,限制基因编辑应用
策略:叶柄外植体+优化激素/筛选浓度,建立快速农杆菌转化体系
载体改造:使用CRISPR/Cas9(pHSE401)、PTG/Cas9(pRGEB32)双载体系统
靶基因修饰:AcPDS、AcZDS 双靶点编辑
结果1:再生周期缩短至1-2周,转化效率达81.25%
结果2:编辑效率≥20%,获得白化表型(移码/提前终止/错义突变)
结果3:AcZDS编辑导致类胡萝卜素降低38%-63%(HPLC验证)
结论:叶柄转化系统+CRISPR编辑为猕猴桃功能研究与遗传改良提供高效方案
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核心内容

本研究以猕猴桃品种‘红阳’叶柄为外植体,通过优化激素组合(MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA)与潮霉素筛选浓度,建立了农杆菌介导的快速遗传转化体系,将再生周期由传统叶片的10–12周缩短至1–2周。在此基础上,利用CRISPR/Cas9载体(pHSE401)和PTG/Cas9载体(pRGEB32)靶向编辑类胡萝卜素合成基因AcPDS与AcZDS。结果显示,pHSE401-AcPDS转化获得13个PCR阳性株,编辑效率23.07%,其中双等位突变系L13因移码提前终止表现完全白化;pHSE401-AcZDS与pRGEB32-AcZDS的编辑效率分别为25%和60%,后者获得纯合单碱基T缺失的Line10白化株。HPLC测定表明,AcZDS编辑植株叶片总类胡萝卜素含量较野生型降低38%,其中玉米黄质、叶黄素和β-胡萝卜素分别下降56%、63%和57%。该研究不仅验证了双sgRNA载体和PTG系统在猕猴桃中的适用性,还明确了AcZDS对类胡萝卜素积累的关键调控作用,为猕猴桃基因功能解析与品质改良提供了高效技术支撑。

创新点

['首次利用叶柄作为外植体建立了猕猴桃快速遗传转化体系,将再生周期从10-12周缩短至1-2周。', '验证了双sgRNA的pHSE401载体和PTG/Cas9载体在猕猴桃中的编辑适用性,编辑效率超过20%。', '获得了AcPDS和AcZDS基因编辑植株,并明确AcZDS编辑导致类胡萝卜素含量显著下降。']

研究对象(2)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
猕猴桃(Actinidia chinensis)品种'红阳' 类胡萝卜素生物合成通路 AcPDS1, AcPDS2 八氢番茄红素脱氢酶(PDS) 催化 类胡萝卜素合成途径关键酶,催化八氢番茄红素脱氢生成ζ-胡萝卜素;突变导致白化矮化
猕猴桃(Actinidia chinensis)品种'红阳' 类胡萝卜素生物合成通路 AcZDS1, AcZDS2 ζ-胡萝卜素脱氢酶(ZDS) 催化 催化ζ-胡萝卜素脱氢生成番茄红素;编辑后类胡萝卜素含量降低

关键发现

  1. 建立了以叶柄为外植体的农杆菌介导转化体系,在MS+2.0mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA+10mg/L Hyg条件下,3个月内获得抗性苗
  2. 叶柄再生出芽仅需1-2周,远快于叶片的10-12周。用pHSE401-AcPDS转化150个叶柄获得16个抗性芽,其中13个PCR阳性,转基因效率81.25%,编辑效率23.07%(4个编辑系/13个阳性),突变类型包括单碱基替换、缺失和双等位突变
  3. L13为双等位编辑(C→T和A缺失)导致移码和提前终止,表现完全白化
  4. L10杂合编辑(A→G,苏氨酸→丙氨酸)表现镶嵌白化。用pHSE401-AcZDS转化250个叶柄获得8个抗性芽,4个阳性,转化效率50%,其中1个编辑系(T2位点A→G,苏氨酸→丙氨酸)表现镶嵌白化。用PTG/Cas9系统(pRGEB32-AcZDS)转化660个外植体获得19个抗性芽,转基因效率2.88%,5个阳性中3个突变系,编辑效率60%
  5. Line10纯合单碱基T缺失导致移码和白化,Line13双等位编辑(C→G和G→C,精氨酸→甘氨酸和脯氨酸),Line15杂合编辑为无义突变产生嵌合体。AcZDS编辑植株叶片总类胡萝卜素含量降低38%,玉米黄质降低56%,叶黄素降低63%,β-胡萝卜素降低57%(与WT相比,P<0.01)。

研究结论

本研究建立了以'红阳'猕猴桃叶柄为外植体的高效遗传转化系统,能显著缩短转化周期。利用该系统结合CRISPR/Cas9和PTG/Cas9系统成功编辑了AcPDS和AcZDS基因,编辑效率超过20%,且AcZDS编辑导致类胡萝卜素含量显著下降,为猕猴桃基因功能研究和遗传改良提供了有效技术体系。