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De novo production of bioactive sesterterpenoid ophiobolins in Saccharomyces cerevisiae cell factories

作者
Caizhe Zhang, Jun Wu, Qing Sun, Shuaishuai Ding, Hua Tao, Yuhua He, Hui Qiu, Bei Shu, Dongqing Zhu, Hengcheng Zhu, Kui Hong
杂志
Microbial Cell Factories(2024)
DOI
10.1186/s12934-024-02406-0
所属领域
代谢工程
关键词
Metabolic engineeringOphiobolinSaccharomyces cerevisiaeSesterterpenoidWhole-cell transformation
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解决的核心问题

实现生物活性蛇孢菌素(ophiobolins)在酿酒酵母中的高效异源从头合成,克服前体供给不足、P450酶表达困难和产物毒性等问题。

研究策略

结合全细胞生物转化与系统代谢工程:增强MVA途径和前体(乙酰-CoA、NADPH)供给,优化P450-CPR系统,并通过PDR工程促进产物外排。

研究路线图

100%
核心问题:酿酒酵母中高效异源合成蛇孢菌素
策略:系统代谢工程+全细胞生物转化
策略:MVA途径增强与前体供给优化
策略:P450-CPR系统与辅因子优化
策略:PDR工程促进产物外排
关键改造:GAL80敲除/tHMG1/ERG基因过表达
关键改造:tPOS5/ADH2/ALD6/ACS1/Cat2
关键改造:BmobIB+Au779CPR+AuoblC
关键改造:PDR5过表达
结果:OphF产量达5.1 g/L(提高33倍)
结果:OphU产量达128.9 mg/L
结果:新化合物5-OH-21-CHO-OphF(IC50=1.33μM)
结论:建立新型酵母细胞工厂范式,实现复杂萜类高效异源合成
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核心内容

本研究在酿酒酵母中构建了蛇孢菌素类萜化合物的从头合成细胞工厂。通过增强甲羟戊酸途径以增加前体乙酰-CoA和NADPH供给,引入蛇孢菌素骨架合酶ObIA,并结合全细胞生物转化策略,使骨架产物OphF的产量从初始7.5 mg/L逐步提升至661.3 mg/L,在补料分批全细胞转化利用乙醇和油酸条件下最高达到5.1 g/L,较此前报道的最高150 mg/L提高约33倍。通过筛选获得最适P450酶BmobIB,并引入异源CPR Au779CPR使后续氧化产物产量提高40%;过表达外排泵基因PDR5使OphU产量达到128.9 mg/L,产物外排比例从81.9%提升至91.4%。此外,研究还发现一种新型强细胞毒性化合物5-羟基-21-甲酰基蛇孢菌素F,其对A2780、Siha和MDA-MB-231细胞系的IC50分别为1.33、4.64和10.71 μM。该工作首次在酿酒酵母中实现了蛇孢菌素骨架及其氧化衍生物的从头合成,为复杂萜类化合物的微生物制造提供了可行范式。

创新点

首次在酿酒酵母中实现蛇孢菌素骨架从头合成;全细胞转化结合代谢工程使OphF产量达5.1 g/L(为已报道最高);发现新型强细胞毒性化合物5-羟基-21-甲酰基蛇孢菌素F;通过PDR工程将OphU产量提升至128.9 mg/L。

研究对象(20)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 GAL80 Gal80p 调控 敲除以实现GAL启动子的葡萄糖调控
Saccharomyces cerevisiae 蛇孢菌素生物合成 AuobIA (AaobIA) ObIA 催化 双功能萜合酶,负责GFPP合成与环化
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 tHMG1 截短HMG-CoA还原酶 催化 限速酶,截短增强活性
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 ERG10 乙酰-CoA乙酰转移酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 ERG13 HMG-CoA合酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 ERG12 甲羟戊酸激酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 ERG8 磷酸甲羟戊酸激酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 MVD1 甲羟戊酸焦磷酸脱羧酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 IDI1 异戊烯基二磷酸异构酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae MVA途径 ERG20 法尼基焦磷酸合酶 催化 过表达增强前体供给
Saccharomyces cerevisiae 蛇孢菌素生物合成 BmobIB 细胞色素P450酶 催化 氧化OphF生成5-OH-21-CHO-OphF和OphU
Saccharomyces cerevisiae 蛇孢菌素生物合成 CPR (Au779CPR) 细胞色素P450还原酶 催化 异源CPR,提供电子,提高P450催化效率
Saccharomyces cerevisiae 蛇孢菌素生物合成 AuoblC FAD依赖氧化还原酶 催化 催化C16-C17脱氢生成OphU
Saccharomyces cerevisiae 辅因子供给 POS5 (tPOS5) NADH激酶 能量供给 截短定位到胞质,提高NADPH供给
Saccharomyces cerevisiae 乙醇代谢 ADH2 乙醇脱氢酶 催化 促进乙醇转化为乙酰-CoA
Saccharomyces cerevisiae 乙酰-CoA合成 ALD6 乙醛脱氢酶(NADP依赖) 催化 过表达增强乙酰-CoA合成
Saccharomyces cerevisiae 乙酰-CoA合成 ACS1 乙酰-CoA合成酶 催化 过表达增强乙酰-CoA合成
Saccharomyces cerevisiae 过氧化物酶体β-氧化 Cat2 肉碱乙酰转移酶 区室化 锚定过氧化物酶体表面,增强胞质乙酰-CoA供应
Saccharomyces cerevisiae PDR网络 PDR5 ABC转运蛋白 转运 过表达促进OphU外排,产量提高至128.9 mg/L
Saccharomyces cerevisiae PDR网络 PDR1 转录因子 调控 调控PDR基因表达,增强耐药性

关键发现

  1. 通过增强MVA途径和全细胞转化,OphF产量从7.5 mg/L逐步提升至661.3 mg/L(Yoph16),补料分批全细胞转化利用乙醇和油酸后最高达5.1 g/L,较报道的最高150 mg/L提高33倍
  2. 过表达tPOS5、ADH2/ALD6/ACS1分别使OphF产量达649.6 mg/L和742.3 mg/L
  3. 利用油酸底物时OphF产量为178 mg/L
  4. 筛选获得最适P450酶BmobIB,异源CPR Au779CPR使后续氧化产物产量提高40%
  5. 过表达PDR5使OphU产量达128.9 mg/L,产物外排比例从81.9%提高到91.4%
  6. 新化合物5-OH-21-CHO-OphF对A2780、Siha、MDA-MB-231的IC50分别为1.33、4.64、10.71 μM,OphU对A2780的IC50为11.73 μM。

研究结论

本研究建立了基于酿酒酵母的细胞工厂,实现了蛇孢菌素骨架OphF及氧化衍生物的从头合成,通过全细胞转化和代谢工程获得5.1 g/L OphF,通过优化CPR和PDR基因获得128.9 mg/L OphU,并发现强活性新化合物5-OH-21-CHO-OphF,为复杂萜类化合物的合成提供了范式。