Engineering of Saccharomyces cerevisiae as a platform strain for microbial production of sphingosine-1-phosphate
- 作者
- In-Seung Jang, Sung Jin Lee, Yong-Sun Bahn, Seung-Ho Baek, Byung Jo Yu
- 单位
- Low-Carbon Transition R&D Department, Korea Institute of Industrial Technology (KITECH), Research Institute of Sustainable Development Technology, Cheonan 31056, Republic of Korea; Department of Biotechnology, College of Life Science and Biotechnology, Yonsei University, Seoul 03722, Republic of Korea; Center for Bio-Based Chemistry, Korea Research Institute of Chemical Technology (KRICT), Ulsan 44429, Republic of Korea
- 杂志
- Microbial Cell Factories(2024)
- DOI
- 10.1186/s12934-024-02579-8
- 所属领域
- 代谢工程
- 关键词
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解决的核心问题
开发高效、低成本的微生物生产鞘氨醇-1-磷酸(S1P)的方法,替代复杂且昂贵的化学合成和血液提取工艺。
研究策略
以酿酒酵母CEN.PK2-1D为底盘,通过代谢工程引入人源鞘脂合成途径:整合人源DES1、ACER1、SPHK1基因,敲除DPL1、LCB5、ORM1基因,并结合需氧高密度培养及补料分批发酵优化,构建产S1P的平台菌株。
核心内容
本研究以酿酒酵母CEN.PK2-1D为底盘,通过代谢工程构建了鞘氨醇-1-磷酸(S1P)的微生物生产平台菌株。研究整合表达人源DES1、ACER1和SPHK1基因构建异源鞘脂合成途径,并敲除DPL1、LCB5和ORM1以优化代谢流,随后结合需氧高密度培养和补料分批发酵进行系统优化。结果显示,DDLA菌株在需氧摇瓶补料发酵中鞘氨醇最高产量达215.8 mg/L,而10L生物反应器中该菌株鞘氨醇产量进一步提升至647.5 mg/L,二氢鞘氨醇为714.3 mg/L;在此基础上过表达SUR2和YDC1的DDLAOGs菌株使二氢鞘氨醇产量达803.4 mg/L,较DDLA提高12%。S1P通过ESI-MS在m/z 202.17处检测到特征峰,且峰高随发酵时间增加。该研究首次证明工程化酿酒酵母可作为S1P微生物生产的可行平台,为鞘脂类化合物的低成本工业化生产提供了新途径。
创新点
['首次报道利用代谢工程酿酒酵母生产S1P', '引入人源鞘脂代谢异源途径(DES1、ACER1、SPHK1)', '通过基因敲除(DPL1、LCB5、ORM1)优化代谢流', '系统优化发酵条件(需氧/厌氧、初始细胞密度、诱导型启动子)', '利用ESI-MS定性验证S1P生产']
研究对象(8)
| 底盘细胞 | 代谢通路 | 基因 | 蛋白 | 功能 | 说明 |
|---|---|---|---|---|---|
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | DES1 | Des1 (sphingolipid delta 4 desaturase) | 催化 | 人源基因,催化二氢鞘氨醇/二氢神经酰胺生成鞘氨醇/神经酰胺,整合于DPL1位点,由TDH3启动子驱动 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | ACER1 | Acer1 (alkaline ceramidase 1) | 催化 | 人源基因,催化神经酰胺水解生成鞘氨醇,整合于LCB5位点,由TDH3启动子驱动 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | SPHK1 | Sphk1 (sphingosine kinase 1) | 催化 | 人源基因,催化鞘氨醇磷酸化生成S1P,受GAL1或SUC2诱导型启动子控制,整合于ORM1位点 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | DPL1 | Dpl1 (dihydrosphingosine phosphate lyase) | 催化 | 内源基因被敲除,防止S1P降解为脂肪酸醛和磷酸乙醇胺,促进鞘氨醇前体积累 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | LCB5 | Lcb5 (sphingoid long-chain base kinase) | 催化 | 内源基因被敲除,阻止二氢鞘氨醇/植物鞘氨醇磷酸化形成副产物,提高鞘氨醇产量 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | ORM1 | Orm1 (negative regulator of serine palmitoyltransferase) | 调控 | 内源基因被敲除,解除对丝氨酸棕榈酰转移酶的负调控,增强鞘脂合成通量 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | SUR2 | Sur2 (sphinganine C4-hydroxylase) | 催化 | 讨论中提及的未来策略,敲除可减少植物鞘氨醇生成,提高鞘氨醇水平 |
| Saccharomyces cerevisiae CEN.PK2-1D | 鞘脂生物合成途径 | YDC1 | Ydc1 (dihydroceramidase) | 催化 | 讨论中提及的未来策略,敲除可减少二氢神经酰胺降解为二氢鞘氨醇,可能提高S1P产量 |
关键发现
- DDLA菌株在需氧高细胞密度摇瓶补料分批发酵中鞘氨醇最高产量为215.8 mg/L(60 h),厌氧高密度仅42.7 mg/L
- DDLAOGs菌株摇瓶发酵中二氢鞘氨醇最高达402.7 mg/L(比DDLA提高1.7倍),鞘氨醇在36 h积累至167.1 mg/L
- 10L生物反应器中,DDLA菌株鞘氨醇最高647.5 mg/L,二氢鞘氨醇714.3 mg/L,植物鞘氨醇401.4 mg/L
- DDLAOGs菌株鞘氨醇431.3 mg/L,二氢鞘氨醇803.4 mg/L(较DDLA增加12%),植物鞘氨醇207.7 mg/L(较DDLA减少48%)
- S1P通过ESI-MS在m/z 202.17处检测到特征峰,且峰高随发酵时间增加。
研究结论
成功构建了产S1P的酿酒酵母平台菌株,通过引入人源DES1、ACER1和SPHK1基因并敲除DPL1、LCB5、ORM1,结合需氧高密度补料分批发酵,实现了鞘脂类物质(包括S1P)的微生物生产。这是首个证明工程化酿酒酵母可作为S1P微生物生产平台菌株的研究。