← 返回列表

Label-free isolation of lipid-rich Saccharomyces cerevisiae mutant by high-throughput flow-mode Raman-activated cell sorting and multi-omics analysis for uncovering the mechanism of enhanced lipid accumulation

作者
Xiaotong Ji, Xixian Wang, Wenjun Zhou, Lin Chen, Tianzhong Liu, Jian Xu, Bo Ma
单位
Key Laboratory of Photoelectric Conversion and Utilization of Solar Energy, Key Laboratory of Shandong Energy Biological Genetic Resources, Qingdao Institute of Bioenergy and Bioprocess Technology, Chinese Academy of Sciences; Shandong Energy Institute; Qingdao New Energy Shandong Laboratory, Qingdao Institute of Bioenergy and Bioprocess Technology, Chinese Academy of Sciences; University of Chinese Academy of Sciences
杂志
Biotechnology for Biofuels and Bioproducts(2025)
DOI
10.1186/s13068-025-02677-8
所属领域
代谢工程
关键词
FlowRACSLipidMulti-omics analysisOleaginous Saccharomyces cerevisiaePalmitoleic acidZeocin compound ARTP mutagenesis
阅读原文
查看 PDF 原文

解决的核心问题

酿酒酵母虽富含棕榈油酸但脂质含量低,需提高其脂质含量以可持续生产棕榈油酸,并解析高产脂突变体的机制。

研究策略

利用zeocin与ARTP复合诱变构建突变库,通过流式拉曼激活细胞分选(FlowRACS)进行无标记高通量筛选高产脂突变体,结合全基因组重测序、转录组和靶向代谢组多组学分析揭示机制。

研究路线图

100%
研究问题:
提高酿酒酵母脂质含量
解析高产脂突变机制
策略:
zeocin-ARTP复合诱变
构建突变库
关键改造:
FlowRACS无标记拉曼
高通量分选高产突变体
结果:
突变株MU2R48脂质含量40.26%
较原始株提高30.85%
结论:
前体生物合成协同上调
碳流重定向驱动脂质积累
Text is not SVG - cannot display

下载 .drawio 源文件

核心内容

本研究针对酿酒酵母脂质含量低、难以可持续生产棕榈油酸的问题,将zeocin与ARTP复合诱变构建突变库,并首次结合流式拉曼激活细胞分选(FlowRACS)进行无标记高通量筛选。通过建立脂质含量与拉曼强度(2844 cm⁻¹)的线性关系(R²=0.87),实现了优于传统荧光法的非侵入式分选,准确率超过85%。获得突变株MU2R48,其脂质含量达40.26%,较原始菌株SC018相对提高30.85%,而生物量(11.94 g/L)与原始菌株(12.02 g/L)基本相当,总脂肪酸产量从1.60 g/L提升至1.75 g/L。多组学分析显示231个差异表达基因,ACS2、FAS2、ACC1、OLE1、GND1、BAT1等关键基因显著上调,POT1、POX1、ADR1、CAT8等下调,ACS2和CIT2基因外显子分别发生点突变。结果表明,脂质积累增强主要由乙酰-CoA和NADPH前体供给通量协同上调及碳流重定向驱动,为高产脂酵母菌株的理性改造提供了关键靶点与机制依据。

创新点

首次将zeocin-ARTP复合诱变与FlowRACS结合用于筛选高产脂酿酒酵母;建立了脂质含量与拉曼强度(2844 cm⁻¹)的线性关系(R²=0.87),优于荧光法;无标记、非侵入式、高通量分选。

研究对象(20)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae SC018 脂肪酸合成 FAS2 脂肪酸合酶亚基α 催化 上调2.28倍(log2=1.19)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 脂肪酸合成 ACC1 乙酰辅酶A羧化酶 催化 上调1.87倍
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 不饱和脂肪酸合成 OLE1 Δ9脱饱和酶 催化 上调1.69倍
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 糖酵解/乙酰-CoA合成 ACS2 乙酰辅酶A合成酶2 催化 上调2.55倍,外显子825位突变
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 乙醇降解/糖酵解 ADH4 醇脱氢酶4 催化 上调2.15倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 乙醇降解/糖酵解 ALD5 醛脱氢酶5 催化 上调1.86倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 糖酵解 PDC1 丙酮酸脱羧酶同工酶1 催化 上调1.01倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 糖酵解 PDC5 丙酮酸脱羧酶同工酶5 催化 上调1.51倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 糖酵解 PDC6 丙酮酸脱羧酶同工酶6 催化 上调1.61倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 磷酸戊糖途径 GND1 6-磷酸葡糖酸脱氢酶 催化 上调1.89倍,提供NADPH
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 氨基酸代谢(亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸) LEU1 3-异丙基苹果酸脱水酶1 催化 上调2.20倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 氨基酸代谢(亮氨酸) LEU2 3-异丙基苹果酸脱氢酶2 催化 上调3.01倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 氨基酸代谢(亮氨酸) LEU9 2-异丙基苹果酸合酶2 催化 上调1.18倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 氨基酸代谢(缬氨酸/异亮氨酸) ILV3 二羟酸脱水酶 催化 上调1.77倍(log2)
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 氨基酸代谢(支链氨基酸) BAT1 支链氨基酸转氨酶 催化 上调7.67倍(log2),与脂质代谢调控相关
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 脂肪酸β-氧化 POT1 3-酮脂酰-CoA硫解酶 催化 下调1.65倍(log2),受ADR1调控
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 脂肪酸β-氧化 POX1 酰基-CoA氧化酶 催化 下调0.6倍
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 脂肪酸利用调控 ADR1 调控蛋白ADR1 调控 下调0.7倍,负调控POT1和POX1
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 糖异生/乙醛酸循环 CAT8 调控蛋白CAT8 调控 下调1.9倍,减少糖异生,促进脂肪酸合成
酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae MU2R48 脂滴组装 SEI1 seipin同源蛋白 区室化 表达量几乎不变(+0.24),脂滴形态与亲本相似

关键发现

  1. 获得突变株MU2R48,其脂质含量为40.26%,较原始菌株SC018相对提高30.85%
  2. 生物量为11.94 g/L,与原始菌株(12.02 g/L)相当
  3. 总脂肪酸产量从1.60 g/L提高到1.75 g/L
  4. FlowRACS分选准确率大于85%
  5. 转录组分析显示231个差异表达基因,其中120个上调、111个下调
  6. ACS2、FAS2、ACC1、OLE1、GND1、BAT1等关键基因显著上调,POT1、POX1、ADR1、CAT8等下调
  7. ACS2基因外显子825位和CIT2基因外显子1179位发生点突变。

研究结论

通过zeocin-ARTP诱变结合FlowRACS成功获得脂质含量达40.26%的酿酒酵母突变株MU2R48;多组学分析表明,脂质积累增强由前体生物合成协同上调、碳流重定向及关键转录调控因子驱动,其中乙酰-CoA和NADPH产生通量增加可能是决定性因素。