← 返回列表

Optimization of the mevalonate-based isoprenoid biosynthetic pathway in Escherichia coli for production of the anti-malarial drug precursor amorpha-4,11-diene

作者
Jennifer R. Anthony, Larry C. Anthony, Farnaz Nowroozi, Gina Kwon, Jack D. Newman, Jay D. Keasling
单位
California Institute for Quantitative Biomedical Research, University of California, Berkeley; Amyris Biotechnologies Inc.; Department of Bioengineering, University of California, Berkeley; Department of Chemical Engineering, University of California, Berkeley; Synthetic Biology Department, Physical Biosciences Division, Lawrence Berkeley National Laboratory
杂志
Metabolic Engineering(2008)
DOI
10.1016/j.ymben.2008.07.007
所属领域
代谢工程
关键词
Amorphadiene synthaseE. coliMelvalonate kinasePathway engineering
阅读原文
查看 PDF 原文

解决的核心问题

大肠杆菌中基于甲羟戊酸的异戊二烯生物合成途径表达不平衡,导致抗疟药前体amorpha-4,11-diene产量低且代谢负担重

研究策略

开发模块化克隆载体系统,通过启动子替换、密码子优化、基因剂量实验和单质粒整合策略平衡基因表达,鉴定并解除限速步骤

研究路线图

100%
研究问题:大肠杆菌甲羟戊酸途径表达不平衡,产量低、代谢负担重
策略:模块化克隆载体系统,平衡基因表达,定位限速步骤
关键改造1:快速克隆系统+启动子替换(lacUV5)与密码子优化
关键改造2:基因剂量实验,鉴定MK与ADS为限速酶
关键改造3:单质粒整合策略(pAM92)及补充ADS恢复
结果:MK额外表达产量×3倍,lacUV5+优化MevT×5倍,最终达到293 mg/L/OD600(7倍提升)
结论:模块化载体系统快速平衡限速酶表达,产量300 mg/L/OD600,策略可推广至其他途径
Text is not SVG - cannot display

下载 .drawio 源文件

核心内容

该研究针对大肠杆菌中甲羟戊酸途径表达不平衡导致抗疟药前体amorpha-4,11-diene产量低的问题,开发了模块化克隆载体系统。通过启动子替换、密码子优化、基因剂量实验和单质粒整合策略,系统平衡了途径基因表达并鉴定限速步骤。研究首先将原始菌株DH1 pMevT pMBIS pADS的产量从约42 mg/L/OD600提升至221 mg/L/OD600,通过使用lacUV5启动子和密码子优化的MevT实现5倍提高;基因剂量实验进一步表明甲羟戊酸激酶(MK)为限速酶,额外表达使产量提高3倍。最终构建的菌株DH1 pAM45 pAM94在75小时内产量达293 mg/L/OD600,为原始菌株的7倍。研究还发现单质粒整合全部途径会导致产量下降和质粒丢失,补充ADS可部分恢复。结果表明,模块化载体系统能快速优化异源途径,平衡限速酶表达,该策略对代谢工程中其他途径的优化具有广泛适用性。

创新点

构建了具有独特兼容酶切位点的快速克隆系统;鉴定了甲羟戊酸激酶(MK)和amorpha-4,11-diene合酶(ADS)为限速酶;通过优化启动子强度和质粒拷贝数使产量提高7倍

研究对象(9)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 (mevalonate pathway) atoB 乙酰乙酰辅酶A硫解酶 (AtoB) 催化 MevT操纵子第一个酶,催化乙酰辅酶A缩合
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 HMGS HMG-CoA合酶 (HMGS) 催化 MevT操纵子;来自酿酒酵母
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 tHMGR 截短的HMG-CoA还原酶 (tHMGR) 催化 MevT操纵子;N端截短
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 MK 甲羟戊酸激酶 (MK) 催化 MBIS操纵子第一个酶;限速酶,额外拷贝使产量提高3倍
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 PMK 磷酸甲羟戊酸激酶 (PMK) 催化 MBIS操纵子
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 PMD 甲羟戊酸焦磷酸脱羧酶 (PMD) 催化 MBIS操纵子
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 idi 异戊烯基焦磷酸异构酶 (IdI) 催化 MBIS操纵子;催化IPP与DMAPP异构化
Escherichia coli DH1 甲羟戊酸途径 ispA 法尼基焦磷酸合酶 (IspA) 催化 MBIS操纵子;催化FPP合成
Escherichia coli DH1 amorpha-4,11-diene合成途径 ADS amorpha-4,11-diene合酶 (ADS) 催化 来自黄花蒿;限速酶,基因剂量影响产量

关键发现

  1. 原始菌株DH1 pMevT pMBIS pADS产量约42 mg/L/OD600
  2. 使用lacUV5启动子和密码子优化的MevT使产量提高5倍(221 mg/L/OD600)
  3. 基因剂量实验表明额外表达MK使产量提高3倍
  4. 最终菌株DH1 pAM45 pAM94达到293 mg/L/OD600(75 h),为原始菌株的7倍
  5. pAM92在单一质粒中整合全部途径时产量降低,补充ADS后部分恢复但仍有质粒丢失(30%/96h)

研究结论

通过模块化载体系统快速优化甲羟戊酸途径,平衡限速酶表达,最终摇瓶产量达到约300 mg/L/OD600,较原始菌株提升7倍,该策略可推广至其他异源途径的优化