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Eat1-Like Alcohol Acyl Transferases From Yeasts Have High Alcoholysis and Thiolysis Activity

作者
Constantinos Patinios, Lucrezia Lanza, Inge Corino, Maurice C. R. Franssen, John Van der Oost, Ruud A. Weusthuis, Servé W. M. Kengen
单位
Laboratory of Microbiology, Department of Agrotechnology and Food Sciences, Wageningen University and Research; Laboratory of Bioprocess Engineering, Department of Agrotechnology and Food Sciences, Wageningen University and Research; Laboratory of Organic Chemistry, Department of Agrotechnology and Food Sciences, Wageningen University and Research
杂志
Frontiers in Microbiology(2020)
DOI
10.3389/fmicb.2020.579844
所属领域
代谢工程
关键词
Clostridium beijerinckiialcohol acyl transferase (AAT)alcoholysisesterthiolysisyeastα/β-hydrolase
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解决的核心问题

揭示酵母Eat1酶是否具有醇解(alcoholysis)和硫解(thiolysis)活性,以及这些活性在体内外对酯类生成的影响。

研究策略

通过体外酶活测定(4-硝基苯酚释放法、GC产物分析)、不同酵母野生株和工程菌株(酿酒酵母、丙酮丁醇梭菌)的体内验证,以及不同醇/硫醇和酰基供体底物特异性分析,系统表征Eat1的醇解与硫解催化能力。

研究路线图

100%
研究问题:Eat1是否具有醇解和硫解活性?
策略:体外酶活测定+体内验证+底物谱分析
关键改造:表达WanEat1于多种酵母及梭菌
结果1:醇解活性为AAT的~445倍
结果2:体内多菌株醇解验证成功
结果3:硫解活性确认(40.04 U/mg)
结论:Eat1为多功能α/β-水解酶,可升级低价值酯
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核心内容

该研究系统揭示了酵母来源的Eat1类醇酰基转移酶具有显著的醇解和硫解活性,而不仅是已知的AAT和酯酶功能。作者以Wickerhamomyces anomalus的WanEat1为代表,通过4-硝基苯酚释放法和GC产物分析进行体外酶活测定,并在多种野生酵母、酿酒酵母及丙酮丁醇梭菌中开展体内验证。结果发现,以乙酸乙酯和1-丙醇为底物时,WanEat1的醇解比活(7.56 U/mg)约为其乙酰CoA/乙醇AAT活性(0.017 U/mg)的445倍;以4-硝基苯乙酯为酰基供体时,10 mM乙醇下比活达124.30 U/mg。Eat1可接受C2-C10醇类,但酰基供体仅限于C2-C4酯。在C. beijerinckii中过表达WanEat1并添加50 mM乙酸乙酯,96小时产生16.92 mM乙酸丁酯,展示了将低值乙酯升级为高值丁酯的潜力。此外,Eat1也具备硫解活性,但高浓度醇或硫醇会不可逆抑制其活性。这项工作揭示了食品发酵中酯类生成的一条新途径,并为利用醇解反应进行酯类升级提供了酶学基础。

创新点

首次证明Eat1不仅具有AAT、酯酶和硫酯酶活性,还兼具高醇解活性和硫解活性;证明醇解活性远高于AAT活性;开发了利用Eat1醇解活性在Clostridium beijerinckii中将乙酯升级为丁酯的新策略。

研究对象(10)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Wickerhamomyces anomalus 酯合成(醇解/硫解/AAT) Eat1 (WanEat1, XP_019041020.1) Eat1 alcohol acyl transferase 催化 本研究的核心酶,纯化后测定其醇解、硫解等活性;在酿酒酵母中过表达最高产0.21 mM丁酸乙酯
Saccharomyces cerevisiae 酯合成(醇解) EAT1 (YGR015C) 及多种Eat1同源基因 Eat1同源酶(SceEat1等) 催化 作为底盘细胞过表达不同Eat1同源物,验证体内醇解活性;空载体对照几乎不产丁酸乙酯
Kluyveromyces marxianus 酯合成(醇解) Eat1 (KMAR_10772) KmaEat1 催化 野生株在含丁酸丁酯时体内醇解产丁酸乙酯约<0.1 mM
Kluyveromyces lactis 酯合成(醇解) Eat1 (KLLA0_E24421g) KlaEat1 催化 野生株醇解活性低,但在酿酒酵母中过表达后可催化丁酸乙酯生成
Cyberlindnera jadinii 酯合成(醇解) Eat1 (CEP25158.1) CjaEat1 催化 野生株在缺铁条件下与丁酸丁酯共培养产0.33 mM丁酸乙酯,过表达后也表现醇解活性
Cyberlindnera fabianii 酯合成(醇解) Eat1 (CDR40574.1) CfaEat1 催化 野生株产丁酸乙酯最高(0.42 mM),但过表达于酿酒酵母时醇解活性不高
Hanseniaspora uvarum 酯合成(醇解) Eat1 (D499_0A01740) HuvEat1 催化 野生株产0.14 mM丁酸乙酯,过表达时活性较高
Wickerhamomyces ciferrii 酯合成(醇解) Eat1 (XP_011273049.1) WciEat1 催化 野生株醇解产丁酸乙酯<0.1 mM,过表达于酿酒酵母后表现出醇解活性
Clostridium beijerinckii NCIMB 8052 酯合成(醇解/酯升级) WanEat1(外源表达) WanEat1 催化 过表达WanEat1并添加乙酸乙酯或丁酸乙酯,分别产乙酸丁酯16.92 mM和丁酸丁酯0.29 mM,用于低价值酯向高价值丁酯的升级
Escherichia coli BL21 (DE3) 蛋白表达 harmWanomala_5543-His (密码子协调的WanEat1) 重组WanEat1-His 催化 用于纯化WanEat1蛋白以进行体外酶活测定

关键发现

  1. 体外醇解活性是AAT活性的约445倍(以乙酸乙酯和1-丙醇为底物时比活7.56 U/mg vs 乙酰CoA/乙醇AAT 0.017 U/mg)
  2. 以4-硝基苯乙酯为酰基供体时,10 mM乙醇下比活达124.30±2.54 U/mg,5 mM 1-丁醇下100.49±0.27 U/mg,2.5 mM 1-己醇下60.25±0.88 U/mg
  3. Eat1可接受C2-C10的多种伯醇/仲醇,但酰基供体仅限于C2-C4(乙酸乙酯比活4.34±1.76 U/mg,丁酸乙酯1.70±0.43 U/mg,戊酸乙酯和己酸乙酯无活性)
  4. 高浓度醇或硫醇(>10 mM)不可逆抑制Eat1
  5. 体内醇解验证:野生酵母C. fabianii、C. jadinii和W. anomalus在含5 mM丁酸丁酯时分别产生0.42±0.05、0.33±0.01和0.32±0.02 mM丁酸乙酯
  6. 在酿酒酵母中过表达WanEat1产生0.21±0.01 mM丁酸乙酯
  7. 在C. beijerinckii中过表达WanEat1并添加50 mM乙酸乙酯,96 h产生16.92±0.58 mM乙酸丁酯
  8. 添加10 mM丁酸乙酯,72 h产生0.29±0.08 mM丁酸丁酯
  9. 硫解活性:乙硫醇存在下4-硝基苯酚释放比活40.04±2.36 U/mg(5 mM时),乙硫醇与乙酸乙酯生成硫代乙酸乙酯比活0.08±0.01 U/mg,但以硫代乙酸乙酯与乙醇进行醇解时比活达6.27±0.86 U/mg。

研究结论

Eat1是兼具醇解和硫解活性的多功能α/β-水解酶,其醇解活性在体外远高于AAT和酯酶活性,且体内多种酵母和工程菌中可发生醇解反应;该发现揭示了酿酒和食品发酵中酯类生成的另一重要途径,并为利用醇解活性升级低价值酯(如将乙酯转化为丁酯)提供了新策略。