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Chrysanthemyl Diphosphate Synthase Operates in Planta as a Bifunctional Enzyme with Chrysanthemol Synthase Activity

作者
Ting Yang, Liping Gao, Hao Hu, Geert Stoopen, Caiyun Wang, Maarten A. Jongsma
单位
Business Unit PRI-Bioscience, Wageningen UR, P.O. Box 16, 6700 AA Wageningen, The Netherlands; Laboratory of Entomology, Wageningen UR, P.O. Box 8031, 6700 EH Wageningen, The Netherlands; Laboratory of Plant Physiology, Wageningen UR, P.O. Box 658, 6700 AR Wageningen, The Netherlands; Key Laboratory for Biology of Horticultural Plants, Ministry of Education, College of Horticulture and Forestry Sciences, Huazhong Agricultural University, Wuhan 430070, China
杂志
J. Biol. Chem.(2014)
DOI
10.1074/jbc.M114.623348
所属领域
代谢工程
关键词
bifunctional enzymechrysanthemol synthasechrysanthemyl diphosphate synthasepyrethrin biosynthesisterpene synthase
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解决的核心问题

传统上认为菊基二磷酸合酶(CDS)仅催化两分子DMAPP缩合生成CPP,但实验发现它还能催化CPP水解为chrysanthemol,是一个双功能酶。需要重新认识其催化功能和命名。

研究策略

通过克隆全长cDNA、在大肠杆菌中表达纯化重组酶,进行体外酶动力学分析;采用定点突变研究NDXXD基序的功能;通过GFP融合蛋白确定亚细胞定位;并在转基因烟草中过表达CDS验证体内功能。

研究路线图

100%
研究问题:CDS是否双功能酶
策略:基因克隆与异源表达
改造1:N283D/N283G定点突变
改造2:GFP融合亚细胞定位
结果1:双功能酶动力学证据
结果2:体内过表达验证功能
结果3:突变致活丧失+质体定位
结论:CDS应更名chrysanthemol synthase
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核心内容

该研究重新审视了除虫菊中菊基二磷酸合酶(CDS)的催化功能。传统观点认为CDS仅催化两分子DMAPP缩合生成菊基二磷酸(CPP),但实验发现该酶实际上是一个双功能酶,还能将CPP进一步水解为chrysanthemol。研究者从除虫菊中克隆了TcCDS全长cDNA,在大肠杆菌中表达纯化重组酶,通过体外酶动力学分析证实其催化CPP生成chrysanthemol的过程符合Michaelis-Menten动力学,Km为196±23 μM,kcat为3.3±0.2×10⁻³ min⁻¹。在DMAPP存在时,chrysanthemol产量在40–150 μM DMAPP范围内高于CPP,半最大活性浓度约为100 μM,而超过300 μM的DMAPP则抑制chrysanthemol合成但促进CPP积累。定点突变实验显示NDXXD基序中的N283D和N283G突变使两种活性完全丧失,说明该基序对双功能催化均至关重要。GFP融合蛋白定位分析表明CDS前54个氨基酸为质体靶向信号。在转基因烟草中过表达CDS后,chrysanthemol释放速率达到0.12–0.16 μg h⁻¹ g⁻¹ FW,验证了其体内功能。该发现揭示了除虫菊酯生物合成中单萜分支的新步骤,并建议将CDS更名为chrysanthemol synthase。

创新点

首次证明CDS是兼具异戊烯基转移酶和萜烯合酶活性的双功能酶;提出将CDS更名为chrysanthemol synthase;阐明NDXXD基序中的天冬酰胺对两种活性均至关重要。

研究对象(5)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Escherichia coli BL21(AI) 异戊二烯/萜类代谢 TcCDS (JX913536) Chrysanthemyl diphosphate synthase (CDS) 催化 重组表达、纯化与体外酶活测定
Escherichia coli BL21(AI) 萜类代谢 TcCDS-N283D CDS-N283D突变体 催化 定点突变导致催化活性丧失
Escherichia coli BL21(AI) 萜类代谢 TcCDS-N283G CDS-N283G突变体 催化 定点突变导致催化活性丧失
Nicotiana tabacum 'Samsun' 除虫菊酯/单萜生物合成 TcCDS CDS 催化 过表达后叶片释放chrysanthemol
烟草原生质体(来自转基因烟草) 亚细胞定位 CDS信号肽-GFP融合基因 CDS(1-54aa)-GFP 区室化 证实N端信号肽靶向质体

关键发现

  1. CDS催化CPP生成chrysanthemol,符合Michaelis-Menten动力学,Km=196±23 μM,kcat=3.3±0.2×10^-3 min^-1
  2. 在DMAPP存在时,chrysanthemol产量在40-150 μM DMAPP范围内高于CPP,半最大活性浓度约100 μM
  3. 高浓度DMAPP(>300 μM)抑制chrysanthemol合成但增加CPP积累
  4. 转基因烟草chrysanthemol释放速率为0.12–0.16 μg h^-1 g^-1 FW
  5. N283D和N283G突变使两种活性完全丧失
  6. CDS的前54个氨基酸为质体靶向信号。

研究结论

CDS在体内外均表现为双功能酶,能依次将DMAPP转化为CPP并进一步水解为chrysanthemol,应更名为chrysanthemol synthase。这一发现揭示了除虫菊酯生物合成中单萜分支的新步骤。