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Challenges and tackles in metabolic engineering for microbial production of carotenoids

作者
Chonglong Wang, Shuli Zhao, Xixi Shao, Ji-Bin Park, Seong-Hee Jeong, Hyo-Jin Park, Won-Ju Kwak, Gongyuan Wei, Seon-Won Kim
杂志
Microbial Cell Factories(2019)
DOI
10.1186/s12934-019-1105-1
所属领域
代谢工程
关键词
CarotenoidsMembrane engineeringSynthetic biologySystems biology
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解决的核心问题

类胡萝卜素微生物生产中产量受限、产物毒性、膜储存空间不足以及稀有类胡萝卜素和衍生物合成途径缺乏等问题。

研究策略

系统综述类胡萝卜素生物合成途径,结合代谢工程和合成生物学工具,通过前体供给增强、异源途径优化、底盘改造、膜工程和基因组编辑等策略提高产量,并拓展产物谱。

研究路线图

100%
研究问题
类胡萝卜素微生物生产面临的挑战
核心策略
代谢工程+合成生物学系统优化
关键改造一
前体供给与通路优化
关键改造二
底盘工程与基因组编辑
关键改造三
膜工程与酶定位优化
关键改造四
产物谱拓展至稀有类胡萝卜素
关键结果
多菌株产量显著提升
结论
代谢工程+膜工程
推动工业化生产
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核心内容

该综述系统梳理了微生物生产类胡萝卜素面临的核心瓶颈,包括前体供给不足、产物毒性、膜储存空间有限以及稀有类胡萝卜素合成途径缺乏等。作者在总结天然合成途径基础上,重点介绍了代谢工程与合成生物学工具的应用,涵盖前体通路强化(如MEP、MVA)、异源途径组装、底盘改造、基因组编辑(CRISPR-Cas9、MAGE)以及膜工程等策略。关键案例显示:在大肠杆菌中组合多基因组装和工程化中心碳代谢后,β-胡萝卜素产量可达2.1 g/L;解脂耶氏酵母通过启动子优化和多拷贝整合实现β-胡萝卜素6.5 g/L;三孢布拉霉在氧传递速率20.5 mM/L/h条件下产β-胡萝卜素704.1 mg/L。此外,通过膜共定位(GlpF融合)使虾青素产量提高2.2倍,引入切割酶可产视黄醛136 mg/L及紫罗酮约500 mg/L。这些结果表明,将通路优化与膜工程、系统生物学相结合,不仅能显著提升产量,还能将产物谱从常见C40类胡萝卜素拓展至类视黄醇和稀有C50衍生物,为工业化生产提供了可行方向。

创新点

强调膜工程对类胡萝卜素生产的重要性(如酶膜定位、膜扩张),总结新型合成生物学工具(CRISPR-Cas9、MAGE、CIChe)的应用,提出从常见C40类胡萝卜素向类视黄醇、稀有C50等延伸的方向。

研究对象(22)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Blakeslea trispora 类胡萝卜素生物合成 催化 天然生产者,通过控制氧传递速率(OTR 20.5 mM/L/h)实现β-胡萝卜素704.1 mg/L
Escherichia coli MEP通路 ispG, ispH IspG, IspH 催化 平衡表达消除中间积累,提高番茄红素和β-胡萝卜素产量
Escherichia coli MVA通路 催化 异源表达细菌MVA通路使β-胡萝卜素产量达465 mg/L
Escherichia coli 类胡萝卜素合成 催化 组合多基因组装实现番茄红素448 mg/g DCW
Escherichia coli 中心碳代谢(EMP/PPP) 能量供给 工程化碳源同化途径提高ATP和NADPH供给,β-胡萝卜素达2.1 g/L
Escherichia coli 类胡萝卜素降解/修饰 ybbO YbbO 催化 内源氧化还原酶,将视黄醛还原为视黄醇,调节类视黄醇组成
Escherichia coli β-胡萝卜素切割 BCMO β-胡萝卜素15,15'-单加氧酶 催化 切割β-胡萝卜素生成视黄醛,产量136 mg/L
Escherichia coli 类胡萝卜素切割 CCD 类胡萝卜素切割双加氧酶 催化 切割产生α/β-紫罗酮,产量约500 mg/L(生物反应器)
Saccharomyces cerevisiae MVA通路/NADPH供给 STB5 Stb5 调控 过表达STB5转录因子提高NADPH,番茄红素41.8 mg/L
Saccharomyces cerevisiae 类胡萝卜素合成 催化 通过增加乙酰-CoA池和通路优化,番茄红素55.6 mg/g DCW(22倍提高)
Saccharomyces cerevisiae 麦角固醇合成 CYP61 Cyp61(甾醇去饱和酶) 催化 删除CYP61解除麦角固醇对MVA通路的反馈抑制,虾青素产量提高1.4倍
Saccharomyces cerevisiae 类胡萝卜素合成 催化 ARTP诱变结合异源途径优化,虾青素达218 mg/L
Corynebacterium glutamicum C50类胡萝卜素合成 crtR CrtR 调控 敲除crtR解除对crt操纵子的抑制,提高番茄红素、β-胡萝卜素和十碳异戊二烯黄素产量
Corynebacterium glutamicum 类胡萝卜素合成 sigA SigA(σ因子) 调控 过表达主σ因子sigA提高类胡萝卜素产量
Corynebacterium glutamicum 类胡萝卜素合成 催化 整合crt通路并敲除crtR,以木糖为碳源共产β-胡萝卜素7 mg/L和L-赖氨酸1.5 g/L
Rhodobacter sphaeroides MEP通路/类胡萝卜素合成 crtI CrtI 催化 替换内源CrtC为异源CrtI,结合增强MEP和阻断PPP,番茄红素10.32 mg/g DCW
Xanthophyllomyces dendrorhous MVA通路 GGPPS GGPP合酶 催化 过表达限速酶GGPPS使虾青素含量提高1.7倍
Xanthophyllomyces dendrorhous 类胡萝卜素修饰 crtZ(β-胡萝卜素羟化酶) β-胡萝卜素羟化酶 催化 引入β-胡萝卜素羟化酶生产玉米黄质0.5 mg/g DCW
Yarrowia lipolytica MVA通路 催化 过表达MVA通路并解除营养缺陷型,番茄红素21.1 mg/g DCW
Yarrowia lipolytica 类胡萝卜素合成 催化 优化启动子-基因对,β-胡萝卜素90 mg/g DCW,6.5 g/L(补料分批)
Yarrowia lipolytica 类胡萝卜素合成 催化 迭代整合多拷贝途径基因,β-胡萝卜素4 g/L
Escherichia coli 膜定位工程 glpF GlpF(甘油通道蛋白) 区室化 与β-胡萝卜素酮化酶和羟化酶融合,促进膜共定位,虾青素产量提高2.2倍

关键发现

  1. Blakeslea trispora经氧传递速率控制(OTR 20.5 mM/L/h)产生β-胡萝卜素704.1 mg/L,添加番茄红素环化酶抑制剂产生番茄红素256 mg/L
  2. E. coli中异源表达MVA通路使β-胡萝卜素达465 mg/L,组合多基因组装得到番茄红素448 mg/g DCW,工程化中央代谢模块(EMP/PPP)后β-胡萝卜素达2.1 g/L
  3. S. cerevisiae结合宿主工程和通路优化使番茄红素达55.6 mg/g DCW(22倍提高),过表达STB5后为41.8 mg/L,ARTP诱变后虾青素达218 mg/L
  4. C. glutamicum敲除crtR提高多种类胡萝卜素产量,整合途径后β-胡萝卜素7 mg/L并共产赖氨酸1.5 g/L
  5. R. sphaeroides替换crtI并增强MEP、阻断PPP后番茄红素10.32 mg/g DCW
  6. X. dendrorhous过表达GGPPS使虾青素提高1.7倍,敲除CYP61提高1.4倍,引入β-胡萝卜素羟化酶生产玉米黄质0.5 mg/g DCW
  7. Y. lipolytica优化启动子-基因对后β-胡萝卜素达90 mg/g DCW和6.5 g/L,迭代整合多拷贝基因达4 g/L,过表达MVA通路及解除营养缺陷后番茄红素21.1 mg/g DCW
  8. E. coli中引入BCMO产生视黄醛136 mg/L,使用CCD产生紫罗酮约500 mg/L(生物反应器)
  9. 通过GlpF融合实现膜共定位使虾青素产量提高2.2倍。

研究结论

微生物生产类胡萝卜素是满足日益增长需求的可行途径。通过代谢工程和合成生物学工具,结合膜工程和系统生物学理解,可进一步提高产量并扩展类胡萝卜素产品谱系,为工业化生产奠定基础。