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Evolutionary and reverse engineering in Saccharomyces cerevisiae reveals a Pdr1p mutation-dependent mechanism for 2-phenylethanol tolerance

作者
Huili Xia, Yue Kang, Zilin Ma, Cuiyu Hu, Qiao Yang, Xiaoling Zhang, Shihui Yang, Jun Dai, Xiong Chen
单位
Key Laboratory of Fermentation Engineering (Ministry of Education), Cooperative Innovation Center of Industrial Fermentation (Ministry of Education & Hubei Province), National"111" Center for Cellular Regulation and Molecular Pharmaceutics, College of Bioengineering, Hubei University of Technology, Wuhan, Hubei 430068, People's Republic of China; ABI Group, College of Marine Science and Technology, Zhejiang Ocean University, Zhoushan 316022, Zhejiang, China; State Key Laboratory of Biocatalysis and Enzyme Engineering, School of Life Sciences, Hubei University, Wuhan 430062, Hubei, China
杂志
Microbial Cell Factories(2022)
DOI
10.1186/s12934-022-01996-x
所属领域
代谢工程
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解决的核心问题

酿酒酵母对2-苯乙醇(2-PE)的耐受性机制尚不清楚,限制了通过理性设计提高其耐受性和产量的能力。本文旨在通过适应性实验室进化获得耐受菌株并解析其遗传基础。

研究策略

利用微生物微滴培养系统(MMC)对酿酒酵母CEN.PK113-7D进行适应性实验室进化(ALE),逐步提高2-PE浓度获得耐受菌株19-2;通过全基因组测序鉴定突变,利用CRISPR-Cas9反向工程构建点突变菌株,验证Pdr1p C862R突变的功能;通过脂肪酸分析、麦角固醇测定、ROS检测和实时定量PCR解析耐受机制。

研究路线图

100%
研究问题:2-PE耐受机制不明
策略:ALE进化获耐受菌株
关键改造1:全基因组测序
关键改造2:鉴定Pdr1p C862R
关键改造3:CRISPR反向工程
关键改造4:机制解析
结果:耐受性与产量提升
结论:分子机制新见解
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核心内容

本研究针对酿酒酵母2-苯乙醇耐受性机制不明的问题,利用微生物微滴培养系统对CEN.PK113-7D进行适应性实验室进化,逐步提高2-PE浓度获得耐受菌株19-2。该菌株在3.5 g/L 2-PE胁迫下最大OD600和生长速率较亲本分别提高86%和22%,膜破裂分数降低55%。全基因组测序鉴定出349个突变,其中PDR1基因C862R错义突变被CRISPR-Cas9反向工程证实为耐受性关键。构建的PDR1_862菌株在3.5 g/L 2-PE下最大OD600比参考菌株高67%,UFA/SFA比率提高42%,麦角固醇含量在稳定期提高72%,胞内ROS浓度降低81%,同时2-PE产量提高11%至3.34 g/L。机制解析表明Pdr1p C862R突变通过调节脂肪酸比例、麦角固醇含量和ROS水平协同增强膜稳定性和细胞耐受性。该研究首次揭示Pdr1p点突变在2-PE耐受中的核心作用,为理性设计高耐受高产酵母菌株提供了明确靶点和分子机制基础。

创新点

首次揭示Pdr1p C862R突变是2-苯乙醇耐受的关键,通过调节脂肪酸比例、麦角固醇含量和ROS水平实现耐受;结合ALE、全基因组测序和反向工程系统解析耐受机制;发现Pdr1p突变不仅提高耐受性还增加2-PE产量。

研究对象(13)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK113-7D 2-苯乙醇耐受 PDR1 Pdr1p 调控 C862R突变(GOF)提高2-PE耐受性,位于中心调控结构域
Saccharomyces cerevisiae CEN.PK113-5D 2-苯乙醇耐受 PDR1 Pdr1p 调控 反向工程验证C862R突变功能
Saccharomyces cerevisiae 细胞壁完整性信号 PKH1 Pkh1p 调控 丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,突变未提高2-PE耐受性
Saccharomyces cerevisiae 环境胁迫适应 PAU20 Pau20p 调控 PAU家族成员,突变未提高2-PE耐受性,但影响脂肪酸组成
Saccharomyces cerevisiae 碳代谢/2-PE合成 PDC1 Pdc1p 催化 丙酮酸脱羧酶,突变与碳代谢相关
Saccharomyces cerevisiae 麦角固醇生物合成 ERG11 Erg11p 催化 羊毛固醇14-α-脱甲基酶,Pdr1p靶标,受Pdr1p突变上调
Saccharomyces cerevisiae 多药耐药/ABC转运 PDR5 Pdr5p 转运 ABC转运蛋白,Pdr1p靶标,参与药物外排
Saccharomyces cerevisiae 多药耐药/ABC转运 PDR10 Pdr10p 转运 ABC转运蛋白,Pdr1p靶标
Saccharomyces cerevisiae 麦角固醇摄取/ABC转运 PDR11 Pdr11p 转运 ABC转运蛋白,参与麦角固醇摄取,Pdr1p靶标
Saccharomyces cerevisiae 麦角固醇摄取 AUS1 Aus1p 转运 ABC转运蛋白,参与麦角固醇摄取,Pdr1p靶标
Saccharomyces cerevisiae 麦角固醇调控 UPC2 Upc2p 调控 转录因子,调控麦角固醇合成基因,Pdr1p互作蛋白
Saccharomyces cerevisiae ROS清除 CTT1 Ctt1p 催化 过氧化氢酶,受Pdr1p突变上调
Saccharomyces cerevisiae ROS清除 GSH2 Gsh2p 催化 谷胱甘肽合成酶,受Pdr1p突变上调

关键发现

  1. 进化菌株19-2在3.5 g/L 2-PE胁迫下最大OD600和生长速率较亲本A2-5分别提高86%和22%,膜破裂分数降低55%。全基因组测序共检测到349个突变(244个indel和105个SNP),其中PDR1基因发生C862R错义突变。反向工程证实Pdr1p C862R突变是提高2-PE耐受性的主要原因:PDR1_862菌株在3.5 g/L 2-PE下最大OD600比参考菌株CEN.PK113-5D高67%
  2. UFA/SFA比率提高42%,细胞膜破裂分数降低38%
  3. 麦角固醇含量在中期对数、后期对数和稳定期分别提高101%、94%和72%
  4. 细胞内ROS浓度降低81%(正文数据)。此外,PDR1_862菌株的2-PE产量比参考菌株提高11%,最高产量达3.34 g/L。

研究结论

本研究证明ALE是提高酵母2-PE耐受性的有效手段,并揭示Pdr1p C862R突变通过调节脂肪酸比例、麦角固醇含量和ROS水平显著增强2-PE耐受性,同时提高2-PE产量,为设计更稳健的天然2-PE合成酵母菌株提供了新见解。