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Natural and engineered production of taxadiene with taxadiene synthase

作者
Sameh Soliman, Yi Tang
单位
Department of Chemical and Biomolecular Engineering, Department of Chemistry and Biochemistry, Department of Bioengineering, University of California, Los Angeles
杂志
Biotechnology and Bioengineering(2017)
DOI
10.1002/bit.25468
所属领域
代谢工程 / 合成生物学
关键词
FungusMetabolic engineeringMetabolic regulationProtein engineeringTaxadiene synthaseTaxus
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解决的核心问题

紫杉醇(Paclitaxel)作为一种重要抗癌药物,其天然来源产量极低、化学合成步骤多且成本高。关键前体taxadiene的合成由限速酶taxadiene synthase(TXS)催化,如何提高TXS活性并实现taxadiene在异源宿主中的高效生产是核心问题。

研究策略

综述TXS的生化特性、晶体结构、代谢调控机制,并总结了通过代谢工程在不同宿主(大肠杆菌、酵母、植物)中重构和优化taxadiene生物合成路径,以及结合蛋白质工程改造TXS的策略。

研究路线图

核心问题:TXS催化效率低,taxadiene异源高效生产面临挑战
研究策略:解析TXS结构与催化机制,优化代谢路径
关键改造一:TXS蛋白工程
TXS晶体结构解析,提供原子级改造蓝图
理性设计+定向进化提升TXS催化效率
关键改造二:代谢工程优化
大肠杆菌:模块化优化MEP途径,产量达1 g/L
酵母:组合GGPPS+HMGR+UPC2-1,产量44倍提升
植物:本氏烟/苔藓等实现异源表达,苔藓产量达0.05%鲜重
核心发现:TXS为限速酶,多宿主验证工程策略有效
未来方向:蛋白工程提升TXS活性,真菌新元件挖掘
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核心内容

该研究系统综述了紫杉醇关键前体taxadiene的异源生物合成进展,重点聚焦限速酶taxadiene synthase(TXS)的生化特性与代谢工程改造策略。TXS的催化效率极低,其kcat仅为0.0106 s⁻¹,kcat/KM为3.5×10³ s⁻¹M⁻¹,比其他植物萜类环化酶低约两个数量级,是紫杉醇生物合成的核心瓶颈。研究梳理了在大肠杆菌、酵母及多种植物中重构taxadiene合成路径的代谢工程策略,包括通过多元模块化优化MEP途径与前体供给,在大肠杆菌中实现最高达1 g/L培养物的taxadiene产量,其中K株产量比B株高2.5倍。在酵母中组合表达Sulfolobus acidocaldarius来源的GGPPS、截短HMGR和突变转录因子UPC2-1后,taxadiene产量从0.2 mg/L提升至8.7 mg/L。植物宿主中,番茄果实表达TXS获得160 mg/kg果实产量,但伴随生长缓慢表型。TXS晶体结构解析为蛋白质工程提供原子水平蓝图,未来结合理性设计与定向进化有望进一步提升其活性。真菌来源的TXS同源酶虽存在争议,但可能成为发掘新催化元件的重要方向。

创新点

['系统总结了TXS的晶体结构及其催化机制,为蛋白工程提供原子水平蓝图', '比较了不同宿主中taxadiene生产的代谢工程策略,包括模块化途径优化、前体供给增强和调控元件改造', '讨论了真菌来源的可能TXS同源酶及真菌生产紫杉醇的争议性进展', '提出了结合理性设计和定向进化来优化TXS活性的未来方向']

研究对象(12)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Escherichia coli MEP途径(非甲羟戊酸途径) txs(来自Taxus brevifolia) Taxadiene synthase (TXS) 催化 异源表达TXS催化GGPP环化生成taxadiene,通过优化MEP途径产量达1 g/L
Escherichia coli MEP途径 dxs, dxr (dxp reductoisomerase) DXP synthase, DXP reductoisomerase 催化 MEP途径中的限速酶,过表达可增加IPP前体供给
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸途径 ggpps(来自Sulfolobus acidocaldarius) Geranylgeranyl pyrophosphate synthase (GGPPS) 催化 利用异源GGPPS合成GGPP,避免与类固醇合成竞争FPP
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸途径 truncated HMGR 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA reductase (HMGR) 催化 截短HMGR去除了反馈抑制,增加MVA途径通量
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸途径 UPC2-1(突变型) UPC2-1 transcription factor 调控 突变转录因子使酵母在有氧条件下摄取外源甾醇,增强萜类通量
Arabidopsis thaliana 类异戊二烯途径(MEP) txs Taxadiene synthase (TXS) 催化 表达TXS产生60 μg/kg干重taxadiene,但因消耗GGPP导致致死表型
Solanum lycopersicum(番茄) 类胡萝卜素/二萜途径 txs Taxadiene synthase (TXS) 催化 将GGPP从类胡萝卜素途径转向taxadiene,产量160 mg/kg果实,但影响赤霉素合成致生长缓慢
Panax ginseng(人参) 类异戊二烯途径 txs Taxadiene synthase (TXS) 催化 转化人参根,产量9.1 μg taxadiene/g干重,无表型变化
Nicotiana benthamiana 类异戊二烯途径 txs, 抑制phytoene synthase表达 Taxadiene synthase (TXS), Phytoene synthase 催化 在CaMV 35S启动子下表达TXS并抑制phytoene synthase,taxadiene产量约40 μg/g干重
Physcomitrella patens(苔藓) 二萜生物合成途径 txs Taxadiene synthase (TXS) 催化 表达TXS,taxadiene产量达组织鲜重的0.05%,不影响内源二萜水平
Taxus brevifolia(太平洋紫杉) 紫杉醇生物合成途径 txs Taxadiene synthase (TXS) 催化 TXS首次分离自该植物,催化GGPP环化生成taxadiene,是紫杉醇生物合成第一步关键酶
Paraconiothyrium SSM001(内生真菌) 可能的真菌紫杉醇途径 未明确的真菌txs同源基因 推测的真菌TXS样蛋白 催化 Western blot检测到大小与植物TXS相似的蛋白,但基因组测序尚未证实存在同源基因

关键发现

['TXS的催化活性(kcat/KM = 3.5×10^3 s^-1 M^-1)比其他植物萜类环化酶低约两个数量级,kcat仅为0.0106 s^-1,表明其是紫杉醇生物合成的限速步骤', '在大肠杆菌中通过多元模块化方法,taxadiene产量最高可达1 g/L培养物', '在大肠杆菌K株中taxadiene产量比B株高2.5倍', '在酵母中单独表达TXS产量不足,通过组合表达Sulfolobus acidocaldarius的GGPPS、截短HMGR和突变转录因子UPC2-1,taxadiene产量从0.2 mg/L提高到8.7 mg/L', '在拟南芥中表达TXS得到60 μg taxadiene/kg干重,但出现致死表型', '在番茄果实中表达TXS获得160 mg taxadiene/kg果实,但生长缓慢', '在人参中表达TXS得到9.1 μg taxadiene/g干重,无表型变化', '在本氏烟中通过抑制phytoene synthase基因表达,taxadiene产量达到约40 μg/g干重', '在苔藓Physcomitrella patens中表达TXS,taxadiene产量可达组织鲜重的0.05%,且不改变内源二萜水平', '紫杉醇从植物中提取量约为1 g/10 kg植物组织,2-4棵成熟树木的紫杉醇量不足以治疗一名患者']

研究结论

TXS是紫杉醇生物合成中的关键限速酶,通过代谢工程在大肠杆菌、酵母及多种植物中已实现了taxadiene的异源生产,其中大肠杆菌中产量已达克级水平。TXS晶体结构的解析为蛋白质工程提供了基础,未来结合理性设计与定向进化有望进一步提升TXS活性。真菌来源的TXS同源酶仍存在争议,但可能是发掘新催化元件的潜在方向。

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