Cytochromes P450 for Terpene Functionalisation and Metabolic Engineering
- 作者
- Irini Pateraki, Allison Maree Heskes, Björn Hamberger
- DOI
- 10.1007/10_2014_301
- 所属领域
- 代谢工程
- 关键词
- 阅读原文
- 查看 PDF 原文
解决的核心问题
萜类化合物具有重要的工业与药学价值,但其天然来源提取困难、化学合成不经济。利用异源宿主进行萜类生物技术生产的关键在于鉴定并利用负责萜烯骨架氧化功能化的细胞色素P450酶。本文系统综述了P450在萜类功能化和代谢工程中的研究进展。
研究策略
通过综述P450遗传多样性、单萜至三萜代谢中的P450鉴定案例以及不同异源表达系统(大肠杆菌、酵母、植物)的应用,总结转录组挖掘、基因簇分析、共表达分析及P450工程化等策略,并展望光合生物等新平台。
研究路线图
核心内容
该论文系统综述了细胞色素P450酶在萜类化合物功能化和代谢工程中的研究进展。萜类化合物具有重要的工业和药学价值,但天然提取困难、化学合成不经济,利用异源宿主进行微生物生产的关键在于鉴定并利用负责萜烯骨架氧化功能化的P450酶。作者梳理了从单萜到三萜代谢中P450的鉴定案例,总结了转录组挖掘、基因簇分析、共表达分析等策略,并讨论了在大肠杆菌、酵母等不同异源表达系统中的应用。通过N端改造和融合表达,植物P450得以在细菌中功能表达;工程化细菌P450BM3则应用于青蒿素半合成路线。多个代表性成果展示了该领域的进展:大肠杆菌中青蒿二烯产量可达27.4 g/L;酿酒酵母中经优化CYP71AV1及相关酶共表达,青蒿酸产量从2.4 g/L提升至25 g/L。此外,毕赤酵母中工程化CYP71D55使nootkatone产量达208 mg/L。该综述表明,结合功能基因组学、酶工程和组合生物合成策略,多种高价值萜类已实现微生物生产,而光合生物底盘、膜锚定工程和人工融合酶等方向将进一步推动产业化应用。
创新点
1. 利用深转录组和共表达分析鉴定萜类P450基因;2. 发现P450的种属特异性‘blooms’驱动化学多样性;3. 在细菌中通过N端改造和融合表达实现植物P450功能表达;4. 利用可溶性细菌P450BM3工程化实现半合成青蒿素;5. 在酵母中组合表达多种P450产生非天然萜类化合物;6. 提出光合生物(如蓝藻、苔藓)作为自养代谢工程平台。
研究对象(20)
| 底盘细胞 | 代谢通路 | 基因 | 蛋白 | 功能 | 说明 |
|---|---|---|---|---|---|
| Escherichia coli | 青蒿素生物合成(倍半萜) | CYP71AV1 | CYP71AV1 | 催化 | 催化amorpha-4,11-diene三步氧化生成青蒿酸;需N端跨膜域改造并共表达青蒿POR,产物总量553 mg/L。 |
| Escherichia coli | 青蒿素半合成(倍半萜) | CYP102A1 (P450BM3) | P450BM3 | 催化 | 来自Bacillus megaterium的可溶性融合P450,经定点突变后催化amorpha-4,11-diene环氧化,产生250 mg/L artemisinic epoxide。 |
| Escherichia coli | 单萜柠檬烯羟化 | P450 alkane hydroxylase (Mycobacterium sp. HXN-1500) | P450羟化酶(HXN-1500) | 催化 | 与铁氧还蛋白和铁氧还蛋白还原酶偶联,催化柠檬烯7位羟化产生紫苏醇,约100 mg/L。 |
| Escherichia coli | 紫杉醇生物合成(二萜) | taxadien-5α-hydroxylase | 紫杉二烯-5α-羟化酶 | 催化 | 与Taxus POR融合并改造N端跨膜域,将98%紫杉二烯转化为taxadien-5α-ol,产量58 mg/L。 |
| Escherichia coli | 类胡萝卜素生物合成(叶黄素) | CYP97A4, CYP97C2 | CYP97A4, CYP97C2 | 催化 | 来自水稻的质体定位P450,无需改造即可在大肠杆菌中功能表达,实现500 μg/g菌体叶黄素积累。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 青蒿素生物合成(倍半萜) | CYP71AV1 | CYP71AV1 | 催化 | 与青蒿POR及细胞色素b5共表达,并引入醇脱氢酶和醛脱氢酶,青蒿酸产量达25 g/L。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 青蒿素生物合成 | POR (来自Artemisia annua) | 细胞色素P450还原酶 | 能量供给 | 为CYP71AV1提供电子;与CYP71AV1表达平衡对产物产量至关重要。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 倍半萜nootkatone生物合成 | CYP71AV8, CYP71D51v2 | CYP71AV8, CYP71D51v2 | 催化 | 可将缬草烯氧化为nootkatol,但生成nootkatone极少;酵母内源酶可催化后续氧化。 |
| Pichia pastoris | 倍半萜nootkatone生物合成 | CYP71D55 | CYP71D55 | 催化 | 来自天仙子,V482I/A484I突变提高催化活性五倍;与内源ADH共同作用,补料分批培养产nootkatone 208 mg/L。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 倍半萜nootkatone生物合成 | CYP706M1 | CYP706M1 | 催化 | 来自柏树,高效催化缬草烯两步氧化为nootkatone,微体产物中nootkatone占82%;但酵母工程菌株仅产144 μg/L。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 甘草酸生物合成(三萜) | CYP88D6 | CYP88D6 | 催化 | 来自甘草,催化β-amyrin C-11氧化,为甘草酸生物合成第一个关键氧化步骤。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 甘草酸生物合成(三萜) | CYP72A154 | CYP72A154 | 催化 | 来自甘草,催化C-30氧化;与CYP88D6组成甘草酸途径的双氧化步骤。 |
| Saccharomyces cerevisiae / Nicotiana benthamiana | 燕麦avenacin生物合成(三萜) | CYP51H10 | CYP51H10 | 催化 | 来自燕麦,催化β-amyrin氧化为12,13β-环氧-16β-羟基-β-amyrin;CYP51家族的植物防御代谢新功能化实例。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 苜蓿三萜皂苷生物合成 | CYP716A12 | CYP716A12 | 催化 | 来自蒺藜苜蓿,多功能氧化酶,可分别氧化β-amyrin、α-amyrin、lupeol生成齐墩果酸、熊果酸、桦木酸。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 苜蓿三萜皂苷生物合成 | CYP93E2 | CYP93E2 | 催化 | 催化β-amyrin C-24氧化,与CYP716A12等组合可产生多种皂苷元。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 人参皂苷生物合成(三萜) | CYP716A47, CYP716A53v2 | CYP716A47, CYP716A53v2 | 催化 | 来自人参,分别催化达玛烯二醇-II转化为原人参二醇(17.2 mg/L)和原人参三醇(15.9 mg/L);与苜蓿CYP716A12共表达产齐墩果酸21.4 mg/L。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 针叶树脂酸生物合成(二萜) | CYP720B1, CYP720B4 | CYP720B1, CYP720B4 | 催化 | 来自火炬松和西加云杉,多底物P450,催化二萜醇经醛氧化为树脂酸。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 裂环马钱子苷/单萜吲哚生物碱生物合成 | CYP76A26 | CYP76A26 | 催化 | 来自长春花,与拟南芥POR1共表达,催化8-羟基香叶醇的多步氧化/脱水生成7-去氧马钱苷酸。 |
| Saccharomyces cerevisiae / Nicotiana benthamiana | 裂环马钱子苷/单萜吲哚生物碱生物合成 | CYP72A224 | CYP72A224 | 催化 | 来自长春花,催化7-去氧马钱苷酸(而非苷元)羟化为马钱苷酸,提示糖基化先于羟化。 |
| Saccharomyces cerevisiae | 檀香油生物合成(倍半萜) | CYP76F (多个成员) | CYP76F P450s | 催化 | 来自檀香,分两个进化枝,催化倍半萜末端甲基羟化,产生santalols和bergamotol,产物谱与檀香油组成一致。 |
关键发现
- ['大肠杆菌中通过表达青蒿法呢烯合酶和异源甲羟戊酸途径,amorpha-4,11-diene产量高达27.4 g/L。', '青蒿CYP71AV1在大肠杆菌中经N端改造和共表达POR后,氧化产物总量达553 mg/L,但青蒿酸仅占一部分。', '通过工程化底物混杂的P450BM3(CYP102A1)突变体,在半合成路线中获得250 mg/L的青蒿环氧前体(artemisinic epoxide)。', '在大肠杆菌中利用来自Mycobacterium HXN-1500的P450与铁氧还蛋白/还原酶组合,约产生100 mg/L紫苏醇。', '在大肠杆菌中高表达紫杉二烯(1 g/L),并将紫杉二烯-5α-羟化酶与紫杉POR融合且工程化N端跨膜域后,底物转化率达98%,产taxadien-5α-ol 58 mg/L。', '水稻CYP97A4和CYP97C2在大肠杆菌中共同表达,实现每克菌体500 μg叶黄素的积累。', '在酿酒酵母中优化CYP71AV1与POR、细胞色素b5的共表达,并引入青蒿醇脱氢酶和醛脱氢酶,青蒿酸产量从2.4 g/L提升至8.1 g/L,经发酵工艺优化最终达25 g/L。', '在毕赤酵母中表达CYP71D55(V482I/A484I突变)并过表达内源醇脱氢酶等,补料分批培养中nootkatone产量达208 mg/L。', '柏树CYP706M1在酵母微体中高效催化缬草烯氧化,产物中nootkatone占82%
- 但工程酵母菌株仅产144 μg/L nootkatone,表明该P450为瓶颈。', '在酿酒酵母中共表达人参CYP716A47、CYP716A53v2和苜蓿CYP716A12,分别产生17.2 mg/L原人参二醇、15.9 mg/L原人参三醇和21.4 mg/L齐墩果酸。']
研究结论
细胞色素P450是萜类化合物结构多样化和功能化的核心酶。随着测序与功能基因组学的发展,基于转录组挖掘和基因簇分析已能高效发现新P450。通过大肠杆菌、酵母等异源表达平台的优化,以及P450酶工程和组合生物合成策略,多种高价值萜类(如青蒿素前体、nootkatone、人参皂苷元等)已实现微生物生产。未来,光合生物底盘、P450膜锚定工程以及人工融合酶等方向将进一步推动萜类生物技术的产业化。