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Advancing metabolic engineering of Yarrowia lipolytica using the CRISPR/Cas system

作者
Tian-Qiong Shi, He Huang, Eduard J. Kerkhoven, Xiao-Jun Ji
单位
南京工业大学生物技术与制药工程学院;南京工业大学药学院;南京工业大学材料化学工程国家重点实验室;江苏省先进材料协同创新中心;瑞典查尔姆斯理工大学生物学与生物工程系系统与合成生物学
杂志
Applied Microbiology and Biotechnology(2018)
DOI
10.1007/s00253-018-9366-x
所属领域
代谢工程
关键词
CRISPR/CasGenome editingMetabolic engineeringYarrowia lipolytica
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解决的核心问题

解脂耶氏酵母(Yarrowia lipolytica)代谢工程中传统基因操作工具(URA blast、Cre/LoxP、TALENs等)效率低、耗时长,难以满足高效、高通量基因组编辑的需求。

研究策略

系统综述CRISPR/Cas系统在解脂耶氏酵母中的开发与应用,包括Cas9/dCas9表达策略(质粒或基因组整合)、sgRNA表达策略(Pol II+核酶、Pol III启动子、T7系统、多基因sgRNA表达)、基因敲除/敲入以及基因抑制/激活(CRISPRi/CRISPRa)等,并列举了在脂质、糖原、木糖代谢等方面的应用案例。

研究路线图

传统基因操作工具效率低耗时长
系统综述CRISPR/Cas系统开发与应用策略
Cas9/dCas9表达与多种sgRNA策略
抑制NHEJ通路提升同源重组效率
多基因编辑与HMEJ/MMEJ等新型修复
脂质/木糖/纤维二糖代谢工程应用
单敲近100%双敲36%三敲19%
脂质含量达90%酶活最高提112倍
CRISPR/Cas已建成,未来需提升多基因编辑与高通量筛选
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核心内容

该文系统综述了CRISPR/Cas系统在解脂耶氏酵母代谢工程中的开发与应用进展。针对传统基因操作工具效率低、耗时长的问题,文章梳理了Cas9/dCas9及sgRNA的多种表达策略,包括质粒或基因组整合表达Cas9、Pol II加核酶、Pol III启动子及T7系统表达sgRNA等,并总结了基因敲除、敲入以及CRISPRi/CRISPRa调控手段。关键结果方面,过表达ACC1和DGA1使脂质含量达41.4%(为亲本株的4.7倍),引入醛脱氢酶后脂质含量最高达90%;SCR1-tRNAGly杂合启动子驱动sgRNA的编辑效率接近100%,单基因敲除频率近100%,三基因约19%。通过抑制NHEJ通路(ku70/ku80)可将同源重组效率提升至80%以上,HMEJ策略效率为HR的两倍;CRISPRa激活BGL1表达提高112倍。这些进展表明CRISPR/Cas系统已显著加速解脂耶氏酵母的菌株改造,但多基因编辑效率和高通量筛选仍有提升空间。

创新点

全面梳理了多种sgRNA表达策略和多基因编辑方案;提出了通过CRISPRi抑制NHEJ通路(ku70/ku80)以提升同源重组效率;建立了基于CRISPRa激活隐蔽糖代谢途径的方法;引入HMEJ、MMEJ等新型修复机制提升编辑效率。

研究对象(14)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Yarrowia lipolytica 脂质生物合成 ACC1 乙酰辅酶A羧化酶 催化 过表达ACC1和DGA1使脂质含量达41.4%(4.7倍提高)
Yarrowia lipolytica 脂质生物合成 DGA1 二酰甘油酰基转移酶 催化 过表达ACC1和DGA1使脂质含量达41.4%(4.7倍提高)
Yarrowia lipolytica 脂质生物合成 醛脱氢酶 催化 引入醛脱氢酶基因提高氧化应激抗性,脂质含量达90%
Yarrowia lipolytica 木糖代谢 XDH, XKS 木糖醇脱氢酶、木酮糖激酶 催化 CRISPR/Cas9敲除证明两者对木糖/木糖醇代谢必需
Yarrowia lipolytica NHEJ修复通路 ku70 Ku70 调控 ku70缺陷可提高HR效率,50 bp同源臂效率43%
Yarrowia lipolytica NHEJ修复通路 ku80 Ku80 调控 ku80缺陷可提高HR效率,1 kb同源臂效率80%
Yarrowia lipolytica 糖原合成 糖原合酶 催化 敲除糖原合酶基因后脂质含量提高60%
Yarrowia lipolytica 色氨酸合成 TRP1 磷酸核糖邻氨基苯甲酸异构酶(TRP1) 催化 作为选择标记被CRISPR/Cas9敲除
Yarrowia lipolytica 精氨酸转运 CAN1 精氨酸通透酶 转运 T7聚合酶系统敲除CAN1效率60%
Yarrowia lipolytica 纤维二糖代谢 BGL1 β-葡萄糖苷酶1 催化 CRISPRa激活后表达提高112倍
Yarrowia lipolytica 纤维二糖代谢 BGL2 β-葡萄糖苷酶2 催化 CRISPRa激活后表达提高43倍
Yarrowia lipolytica CRISPR/Cas9基因编辑 Cas9 Cas9核酸酶 催化 Cas9蛋白催化DNA双链断裂
Yarrowia lipolytica CRISPRi/CRISPRa dCas9 去活化的Cas9 调控 dCas9融合转录抑制/激活域实现基因调控
Yarrowia lipolytica CRISPR/Cas9(T7系统) T7RNAP T7 RNA聚合酶 催化 异源T7聚合酶转录sgRNA,编辑效率约60%

关键发现

  1. 过表达ACC1和DGA1使脂质含量达41.4%(亲本株的4.7倍),引入醛脱氢酶基因后脂质含量最高达90%
  2. SCR1-tRNAGly杂合Pol III启动子驱动的sgRNA编辑效率接近100%
  3. T7聚合酶系统编辑效率约60%
  4. 单基因敲除频率近100%,双基因约36%,三基因约19%
  5. ku70缺陷菌株中50 bp同源臂HR效率达43%,ku80缺陷株1 kb同源臂HR效率80%,ku70缺陷最高85%
  6. 加入羟基脲后50 bp臂HR效率46%,100 bp臂达100%
  7. Holkenbrink等单基因敲除效率>80%,双基因6-66%,90 bp双链寡核苷酸修复效率100%
  8. Gao等HMEJ策略效率是HR的两倍
  9. CRISPRi抑制ku70/ku80后HR效率近90%
  10. dCpf1和dCas9基因抑制率分别为85%和92%
  11. CRISPRa激活BGL1表达提高112倍、BGL2提高43倍
  12. 敲除糖原合酶基因后脂质含量提高60%。

研究结论

CRISPR/Cas系统已在解脂耶氏酵母中成功建立并广泛应用于代谢工程,显著加速了基因组编辑和菌株改造;未来需进一步提高多基因编辑效率、实现更精准的位点定向突变以及开发高通量筛选技术。

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