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High-level biosynthesis of enantiopure germacrene D in yeast

作者
Shubha Sharma, Seema Chaurasia, Sandeep Dinday, Gaurav Srivastava, Anamika Singh, Chandan Singh Chanotiya, Sumit Ghosh
单位
Plant Biotechnology Division, Council of Scientific and Industrial Research- Central Institute of Medicinal and Aromatic Plants (CSIR- CIMAP), Lucknow 226015, India; Academy of Scientific and Innovative Research (AcSIR), Ghaziabad 201002, India; Present Address: School of Agricultural Biotechnology, Punjab Agricultural University, Ludhiana 141004, India; Phytochemistry Division, Council of Scientific and Industrial Research- Central Institute of Medicinal and Aromatic Plants (CSI- CIMAP), Lucknow 226015, India
杂志
Applied Microbiology and Biotechnology(2024)
DOI
10.1007/s00253-023-12885-7
所属领域
代谢工程
关键词
ERG pathwayEnantiomerGermacrene DMetabolc engineeringSaccharomyces cerevisiaeSesquiterpenoid
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解决的核心问题

如何在酵母中实现高产量、对映体纯的(+)-和(-)-germacrene D生物合成,摆脱对植物提取的依赖,满足香料工业的可持续供应需求。

研究策略

对酿酒酵母进行系统代谢工程改造:过表达ERG通路中8个酶(ERG10、ERG13、tHMG1、ERG12、ERG8、ERG19、IDI、ERG20)以增强FPP前体供应;用铜抑制性启动子P_CTR3替换ERG9启动子以限制FPP流向麦角固醇竞争通路;敲除GAL80实现组成型表达;在GAL80、LPP1和rDNA位点多拷贝整合密码子优化的Solidago canadensis germacrene D合酶(ScaGerD(+)和ScaGerD(-));并过表达Yarrowia lipolytica ATP-柠檬酸裂解酶(YlACL)将线粒体柠檬酸池偶联至胞质乙酰-CoA,进一步提高FPP通量。

研究路线图

研究问题:在酵母中实现高产量对映体纯germacrene D生物合成
策略:系统代谢工程改造酿酒酵母,增强FPP前体供应并消除竞争通路
关键改造1:过表达8个ERG通路酶增强FPP前体供应
关键改造2:铜抑制启动子替换ERG9启动子限制竞争通路
关键改造3:敲除GAL80和LPP1,多拷贝整合倍半萜合酶
关键改造4:过表达YlACL增强胞质乙酰-CoA供应
结果:诱导型菌株(+)34.77 μg/ml、(-)158.06 μg/ml;组成型菌株(+)41.36、(-)728.87 μg/ml;YlACL增强后(+)137.71、(-)815.81 μg/ml;补料分批摇瓶最高(+)290.28、(-)2519.46 μg/ml
结论:通过综合代谢工程策略,首次在酵母中实现无需诱导剂、高产量、对映体纯的germacrene D生物合成,摇瓶产量为迄今最高,为工业规模化生产奠定基础
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核心内容

本研究针对植物提取供应不足的问题,对酿酒酵母进行系统代谢工程改造,以实现对映体纯(+)-和(-)-germacrene D的高水平生物合成。策略上过表达ERG通路中8个关键酶以增强FPP前体供应,同时用铜抑制性启动子替换ERG9启动子削弱竞争性麦角固醇支路,并敲除GAL80实现组成型表达,此外还将密码子优化的Solidago canadensis germacrene D合酶多拷贝整合至GAL80、LPP1及rDNA位点。研究还创新性地引入oleaginous酵母Yarrowia lipolytica的ATP-柠檬酸裂解酶,将线粒体柠檬酸池偶联至胞质乙酰-CoA以进一步提升通量。关键结果方面,组成型菌株CENses8(-D)无需诱导剂即可产生728.87 μg/ml的(-)-germacrene D,较亲本提高数十倍;进一步表达YlACL后,在葡萄糖补料分批摇瓶发酵中(+)-和(-)-germacrene D产量分别达290.28 μg/ml和2519.46 μg/ml,为迄今摇瓶发酵最高水平。这些结果意味着通过整合前体强化、竞争抑制和多拷贝合酶表达及代谢偶联策略,已成功构建无需诱导剂、高产且对映体纯的germacrene D酵母生产平台,具备显著工业规模化潜力。

创新点

首次在ERG通路工程酵母中过表达oleaginous酵母的ATP-柠檬酸裂解酶;通过敲除GAL80构建无需诱导剂的组成型对映体纯germacrene D生产平台;实现迄今摇瓶发酵中(+)-和(-)-germacrene D的最高产量。

研究对象(15)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG10 ERG10(乙酰-CoA C-乙酰转移酶) 催化 过表达以增强乙酰-CoA转化为乙酰乙酰-CoA
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG13 ERG13(HMG-CoA合酶) 催化 过表达以增强HMG-CoA合成
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 tHMG1 tHMG1(截短的HMG-CoA还原酶) 催化 过表达截短形式(去除N端调控域)以消除反馈抑制
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG12 ERG12(甲羟戊酸激酶) 催化 过表达
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG8 ERG8(磷酸甲羟戊酸激酶) 催化 过表达
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG19 ERG19(二磷酸甲羟戊酸脱羧酶) 催化 过表达
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 IDI IDI(异戊烯基二磷酸异构酶) 催化 过表达
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG20 ERG20(法尼基焦磷酸合酶) 催化 过表达以直接生成FPP
Saccharomyces cerevisiae 甲羟戊酸/ERG通路 ERG9 ERG9(角鲨烯合酶) 催化 其天然启动子被替换为铜抑制性启动子P_CTR3,以限制FPP流向麦角固醇竞争通路
Saccharomyces cerevisiae 半乳糖代谢/GAL调控 GAL80 GAL80(GAL基因转录抑制因子) 调控 敲除以实现GAL启动子组成型激活,无需半乳糖诱导
Saccharomyces cerevisiae 萜类前体代谢 LPP1 LPP1(脂质磷酸磷酸酶) 催化 敲除以减少FPP去磷酸化消耗,提高FPP用于germacrene D合成
Saccharomyces cerevisiae 倍半萜生物合成 ScaGerD(+) (+)-germacrene D合酶 催化 来自Solidago canadensis,密码子优化,多拷贝整合于GAL80、LPP1和rDNA位点
Saccharomyces cerevisiae 倍半萜生物合成 ScaGerD(-) (-)-germacrene D合酶 催化 来自Solidago canadensis,密码子优化,多拷贝整合于GAL80、LPP1和rDNA位点
Saccharomyces cerevisiae 乙酰-CoA供应 YlACL1 YlACL1(ATP-柠檬酸裂解酶亚基1) 催化 来自Yarrowia lipolytica,密码子优化,过表达以增强胞质乙酰-CoA
Saccharomyces cerevisiae 乙酰-CoA供应 YlACL2 YlACL2(ATP-柠檬酸裂解酶亚基2) 催化 来自Yarrowia lipolytica,密码子优化,与YlACL1共同形成功能性ATP-柠檬酸裂解酶

关键发现

  1. 工程菌CENses5C(+D)和CENses5C(-D)经半乳糖诱导后,(+)-和(-)-germacrene D产量分别达34.77 μg/ml和158.06 μg/ml,比亲本CEN0提高约30倍和13倍
  2. 组成型菌株CENses8(+D)和CENses8(-D)无需半乳糖即可产生41.36 μg/ml和728.87 μg/ml
  3. 进一步表达YlACL后,CENses8(+D)*和CENses8(-D)*产量提升至137.71 μg/ml和815.81 μg/ml,为亲本CEN.PK2.1C的67-120倍
  4. 在葡萄糖补料分批摇瓶发酵中,CENses8(+D)*和CENses8(-D)**分别产生290.28 μg/ml和2519.46 μg/ml的(+)-和(-)-germacrene D,为迄今摇瓶发酵最高产量。CENses6(-D)产量比CENses5C(-D)高3.6倍,CENses7(+D)比CENses6(+D)高4.81倍。此外,CENses7(+D)在48h时产量25.96 μg/ml,CENses8(+D)在120h时产量201.37 μg/ml。

研究结论

通过综合代谢工程策略,包括敲除GAL80和LPP1、过表达8个ERG酶、多拷贝整合germacrene D合酶及偶联ATP-柠檬酸裂解酶,成功实现了酿酒酵母中组成型、高产量、对映体纯的(+)-和(-)-germacrene D生物合成,摇瓶产量为迄今最高,为工业规模化生产奠定了基础。

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