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The bZIP Transcription Factor Fgap1 Mediates Oxidative Stress Response and Trichothecene Biosynthesis But Not Virulence in Fusarium graminearum

作者
Mathilde Montibus, Christine Ducos, Marie-Noelle Bonnin-Verdal, Jorg Bormann, Nadia Ponts, Florence Richard-Forget, Christian Barreau
单位
Institut National de la Recherche Agronomique, Unité de Recherche 1264 MycSA, Villenave d'Ornon, France; University of Hamburg, Biocenter Klein Flottbek, Department of Molecular Phytopathology and Genetics, Hamburg, Germany; Centre National de la Recherche Scientifique, Unité de Recherche 1264 MycSA, Villenave d'Ornon, France
杂志
PLoS ONE(2013)
DOI
10.1371/journal.pone.0083377
所属领域
代谢工程
关键词
Fgap1Fusarium graminearumbZIP transcription factoroxidative stresstrichothecene biosynthesisvirulence
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解决的核心问题

解析禾谷镰刀菌中bZIP转录因子Fgap1在氧化应激响应、单端孢霉烯族毒素生物合成及致病性中的作用及其调控机制。

研究策略

通过基因敲除(ΔFgap1)、回补(ΔFgap1:ap1)和表达组成型活性截短形式(Fgap1c trunc)的遗传操作,结合表型分析、毒素产量检测、Tri基因及抗氧化基因表达分析、小麦侵染试验,研究Fgap1的功能。

研究路线图

100%
Fgap1在氧化应激与毒素合成中的作用
基因敲除/回补/截短突变体表型分析
ΔFgap1、ΔFgap1:ap1、Fgap1c
氧化胁迫敏感性/毒素产量/Tri表达
抗氧化酶表达/小麦侵染试验
Fgap1缺失致氧化敏感且毒素上调但毒力不变
Fgap1间接调控Tri基因且介导氧化应激激活毒素合成
Fgap1是氧化应激和毒素合成关键调控因子,非致病因子
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核心内容

该研究在禾谷镰刀菌中鉴定了bZIP转录因子Fgap1(FGSG_08800),通过基因敲除、回补及表达缺失核输出信号(NES)的组成型活性截短体Fgap1c,系统解析了其功能。结果显示,ΔFgap1突变体对H₂O₂、镉、NaCl和山梨醇的胁迫敏感性显著增加。在GYEP培养基培养4天时,ΔFgap1的DON+15ADON产量高达208.7±90.5 ng/mg干生物量,而野生型仅为10.4±1.3,Tri5表达上调约2.3倍(log2比值);回补株产量恢复至3.3±2.1,而Fgap1c仅产痕量毒素且Tri基因显著下调。0.5 mM H₂O₂处理可使野生型毒素积累提高7倍,但该响应在ΔFgap1中消失、在Fgap1c中减弱。抗氧化酶分析表明,野生型中H₂O₂诱导Catalase1、Catalase3和MnSOD1上调,而ΔFgap1中三种过氧化氢酶和两个Cu/ZnSOD下调。小麦侵染试验显示,ΔFgap1和回补株致病性与野生型相当,Fgap1c毒力略降但无显著差异。这些结果揭示Fgap1是氧化应激响应的关键负向调控因子,通过间接机制调控Tri基因表达和毒素积累,但并非致病性所必需,其介导的抗氧化酶网络与毒素合成调控密切相关。

创新点

首次在禾谷镰刀菌中鉴定并功能表征Yap1同源物Fgap1;构建了缺失NES的组成型活性截短突变体;揭示Fgap1介导氧化应激与单端孢霉烯族毒素合成之间的调控联系。

研究对象(14)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Fusarium graminearum INRA 605 氧化应激响应与单端孢霉烯族毒素生物合成 Fgap1 Fgap1(bZIP转录因子) 调控 Yap1同源物,响应氧化应激并调节Tri基因表达和毒素合成
Fusarium graminearum INRA 605 单端孢霉烯族毒素生物合成 Tri4 Tri4 催化 毒素合成相关基因,在ΔFgap1中表达上调,在Fgap1c trunc中下调
Fusarium graminearum INRA 605 单端孢霉烯族毒素生物合成 Tri5 Tri5 催化 单端孢霉烯合成第一步酶,ΔFgap1中表达上调log2(2.3),回补后恢复
Fusarium graminearum INRA 605 单端孢霉烯族毒素生物合成 Tri6 Tri6 调控 Tri基因簇内转录因子,H2O2处理后过表达
Fusarium graminearum INRA 605 单端孢霉烯族毒素生物合成 Tri10 Tri10 调控 Tri基因簇内转录因子,H2O2处理后过表达
Fusarium graminearum INRA 605 单端孢霉烯族毒素生物合成 Tri12 Tri12 转运 可能参与毒素转运,表达受Fgap1影响
Fusarium graminearum INRA 605 单端孢霉烯族毒素生物合成 Tri101 Tri101 催化 位于Tri5簇外,H2O2处理后表达上调
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 Catalase1 (FGSG_06554) Catalase 1 催化 孢子特异性过氧化氢酶,H2O2处理后上调,ΔFgap1中下调
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 Catalase2 (FGSG_02881) Catalase 2 催化 过氧化物酶体过氧化氢酶,ΔFgap1中下调
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 Catalase3 (FGSG_06733) Catalase 3 催化 分泌型过氧化氢酶,H2O2处理后上调,ΔFgap1中下调
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 MnSOD1 (FGSG_04454) MnSOD1(线粒体超氧化物歧化酶) 催化 H2O2处理后诱导最高;Fgap1c trunc中过表达超过10倍
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 MnSOD2 (FGSG_02051) MnSOD2 催化 表达受Fgap1影响
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 Cu/ZnSOD1 (FGSG_08721) Cu/ZnSOD1 催化 ΔFgap1中表达下调
Fusarium graminearum INRA 605 抗氧化防御 Cu/ZnSOD2 (FGSG_00576) Cu/ZnSOD2 催化 ΔFgap1中表达下调

关键发现

  1. 鉴定到Fgap1(FGSG_08800),编码588氨基酸蛋白,含bZIP结构域和C端c-CRD(含NES),无n-CRD。
  2. ΔFgap1突变体对H2O2、镉、NaCl和山梨醇胁迫敏感性增加,Fgap1c trunc对渗透胁迫适应性增强。
  3. ΔFgap1在GYEP培养5天和14天时毒素产量显著高于野生型;4天时DON+15ADON产量为208.7±90.5 ng/mg干生物量(野生型10.4±1.3),Tri5表达上调log2比值为2.3±0.2;回补株产量恢复至3.3±2.1。Fgap1c trunc仅产痕量毒素,Tri基因显著下调。
  4. 5 mM H2O2处理使野生型5天时TCTB积累提高7倍,Tri基因过表达;ΔFgap1中此响应消失,Fgap1c trunc中响应减弱。
  5. 野生型中H2O2诱导Catalase1、Catalase3和MnSOD1显著上调,MnSOD1诱导最高;ΔFgap1中三种过氧化氢酶和两个Cu/ZnSOD下调,Fgap1c trunc中MnSOD1过表达超过10倍。
  6. 小麦侵染试验中ΔFgap1和回补株致病性与野生型相当,Fgap1c trunc毒力略有降低但差异不显著;毒素水平ΔFgap1为113.9±8.1 μg/mg干小麦,Fgap1c trunc为49.6±10.7(野生型153.4±2.0)。
  7. Fgap1不影响致病性,但对氧化应激响应和毒素合成调控起关键作用。

研究结论

Fgap1是禾谷镰刀菌氧化应激响应的关键调控因子,通过间接方式调控Tri基因表达和单端孢霉烯族毒素积累,介导氧化应激对毒素合成的激活作用;但Fgap1不是致病性所必需的,其调控的抗氧化酶(如MnSOD1)可能与毒素生物合成调控网络相连。