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Directed evolution of an aminoalcohol dehydrogenase for efficient production of double chiral aminoalcohols

作者
Nobuyuki Urano, Satoko Fukui, Shoko Kumashiro, Takeru Ishige, Shinji Kita, Keiji Sakamoto, Michihiko Kataoka, Sakayu Shimizu
单位
Division of Applied Life Sciences, Graduate School of Agriculture, Kyoto University, Kitashirakawa-Oiwakecho, Sakyo-ku, Kyoto 606-8502, Japan; Research Institute, Daiichi Fine Chemical Co., 530 Chokejii, Takaoka, Toyama 933-8511, Japan
杂志
Journal of Bioscience and Bioengineering(2010)
DOI
10.1016/j.jbiosc.2010.11.005
所属领域
代谢工程
关键词
Amino acid substitutionAminoalcohol dehydrogenaseDirected enzyme evolutionEnzyme screeningShort-chain alcohol dehydrogenase
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解决的核心问题

氨基酸醇脱氢酶(AADH)催化不对称还原生产双手性氨基醇(如dPE)时,受到产物累积的抑制,导致产率受限(约40-50 mg/ml),需要获得对产物耐受性更高的酶突变体。

研究策略

通过易错PCR对aadh基因进行随机突变构建突变体库,利用基于pH指示剂(酚红)的颜色变化高通量筛选方法,筛选在高浓度产物dPE(80 mg/ml)存在下仍具有活性的突变酶,并结合动力学参数分析鉴定关键氨基酸位点。

研究路线图

100%
AADH催化产dPE受产物抑制,产率受限
易错PCR构建突变体文库 + pH指示剂高通量筛选
筛选~5000克隆,获S214R、G73S单突变体,组合成双突变体G73S/S214R
动力学分析:S214R提kcat 3.3倍,G73S降底物亲和力,双突变Ki达17.3 mM
生物转化:AADHm1产EPE至70.7 mg/ml(87.6%产率),WT仅40 mg/ml停止
关键改造:G73S/S214R双突变,S214R催化效率↑,G73S底物结合调节,协同解除抑制
结论:双突变体显著改善产物耐受性,具工业化应用潜力,为SDR家族研究提供线索
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核心内容

该研究针对氨基酸醇脱氢酶(AADH)在催化合成双手性氨基醇过程中受产物抑制导致产率受限的问题,采用易错PCR对aadh基因进行随机突变,构建了约5000个克隆的突变体库,并开发了基于酚红pH指示剂的颜色变化高通量筛选方法,无需监测NADPH消耗即可直观评估酶在高浓度产物存在下的活性。通过筛选,获得两个单点突变体AADHw1(S214R)和AADHw2(G73S),并进一步构建双突变体AADHm1(G73S/S214R)。动力学分析显示,S214R突变使kcat提高约3.3倍,G73S突变使Km升高约1.3倍,所有突变体的产物抑制常数Ki较野生型(5.7 mM)提高2–3倍,其中双突变体达17.3 mM。在生物转化实验中,野生型在产物约40 mg/ml时停止生产,而AADHm1可产至70.7 mg/ml,摩尔产率87.6%,显著缓解了产物抑制。该研究证明随机突变结合高通量筛选可有效提升酶对产物的耐受性,双突变体在工业生产双手性氨基醇方面具有应用潜力,也为短链脱氢酶还原酶家族的结构-功能关系提供了见解。

创新点

['开发了基于pH指示剂(酚红)的颜色检测高通量筛选方法,无需昂贵NADPH消耗监测,可直观检测反应进程', '获得了两个单点突变体(S214R和G73S)及一个双突变体(G73S/S214R),显著提高了对产物dPE的耐受性', '动力学分析揭示Ser214残基影响酶活性(kcat提高约3倍),Gly73残基参与底物结合(Km升高),为SDR家族结构-功能关系提供见解']

研究对象(7)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Rhodococcus erythropolis MAK154 氨基醇不对称还原途径 aadh AADH(氨基醇脱氢酶,野生型) 催化 催化(S)-1-苯基-1-酮-2-甲氨基丙烷还原生成dPE,受产物dPE抑制,本研究改造对象
Bacillus megaterium NADPH再生系统 gdh GDH(葡萄糖脱氢酶) 能量供给 催化葡萄糖氧化生成葡萄糖酸,同时再生NADPH,为AADH还原反应提供还原力
Escherichia coli JM109 氨基醇不对称还原途径(全细胞催化) aadh(野生型及突变体), gdh AADH(野生型/突变体), GDH 催化 共表达AADH和GDH的重组E. coli,用于筛选及dPE/EPE生产;AADHm1表达菌在100 mg/ml dPE下仍有活性
Escherichia coli BL21(DE3) 蛋白表达与纯化 aadh(野生型及突变体) AADH(His标签融合) 催化 用于过量表达并纯化野生型及突变体AADH,进行动力学参数测定
Escherichia coli(重组表达) 氨基醇不对称还原途径 aadh突变体(S214R) AADHw1(S214R突变体) 催化 kcat升至865 min⁻¹,Ki=11.8 mM,较野生型活性提高约3.3倍,产物耐受性提高约2倍
Escherichia coli(重组表达) 氨基醇不对称还原途径 aadh突变体(G73S) AADHw2(G73S突变体) 催化 Km升至390 μM,Ki=15.2 mM,提示Gly73参与底物结合;在80 mg/ml dPE下仍可产EPE
Escherichia coli(重组表达) 氨基醇不对称还原途径 aadh突变体(G73S/S214R) AADHm1(双突变体) 催化 kcat=874 min⁻¹,Km=406 μM,Ki=17.3 mM;生物转化中EPE产量达70.7 mg/ml,摩尔产率87.6%

关键发现

  1. ['筛选约5000个克隆,获得两个有益突变体AADHw1(S214R)和AADHw2(G73S),并构建双突变体AADHm1(G73S/S214R)', '在80 mg/ml dPE-HCl存在下,表达突变酶的E. coli转化细胞可产生2-7 mg/ml EPE产物,而野生型几乎无活性
  2. 在100 mg/ml dPE-HCl下AADHm1仍产生约6 mg/ml EPE-HCl', '生物转化实验中,野生型AADH在EPE-HCl约40 mg/ml后停止生产,而AADHm1可生产至70.7 mg/ml(328.0 mM),摩尔反应产率87.6%', '动力学参数(0.32 mM NADPH):野生型kcat=264 min⁻¹, Km=295 μM, kcat/Km=0.90 μM⁻¹·min⁻¹, Ki=5.7 mM
  3. AADHw1(S214R):kcat=865, Km=290, kcat/Km=2.99, Ki=11.8
  4. AADHw2(G73S):kcat=278, Km=390, kcat/Km=0.71, Ki=15.2
  5. AADHm1(G73S/S214R):kcat=874, Km=406, kcat/Km=2.16, Ki=17.3', '所有突变体的Ki值比野生型提高2-3倍,其中AADHm1的Ki达17.3 mM', 'S214R突变使kcat提高约3.3倍,G73S突变使Km提高约1.3倍,双突变结合了两者优势']

研究结论

通过随机突变成功改善了AADH的催化活性和产物抑制耐受性,双突变体AADHm1在产物存在下活性最高,有望应用于dPE等双手性氨基醇的工业化生产,并为SDR家族酶的结构-功能关系研究提供了线索。