Steviol glycoside biosynthesis
- 作者
- J.E. Brandle, P.G. Telmer
- 单位
- Southern Crop Protection and Food Research Center, 1391 Sandford Street, London, Ont., Canada N5V 4T3
- 杂志
- Phytochemistry(2007)
- DOI
- 10.1016/j.phytochem.2007.02.010
- 所属领域
- 植物代谢工程
- 关键词
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解决的核心问题
解析甜菊糖苷生物合成途径的完整基因网络、酶功能、亚细胞定位及液泡转运机制
研究策略
结合EST基因组学与植物生物化学,通过异源表达、基因互补、GFP融合定位和酶活性分析等方法克隆并功能表征途径中的关键酶
核心内容
本研究系统解析了甜菊(Stevia rebaudiana)中甜菊糖苷生物合成的完整基因网络与亚细胞定位机制。通过EST基因组学、异源表达、GFP融合定位及酶活性分析,克隆并功能验证了MEP途径(DXS、DXR等)、二萜环化(CDPS、KS)及糖基转移酶(UGT85C2、UGT74G1、UGT76G1)等关键酶。研究发现KO定位于内质网而非此前认为的叶绿体,三个UGT则定位于细胞质,据此提出代谢通道假说,并纠正了KAH蛋白纯化的错误鉴定。关键结果表明,甜菊糖苷中stevioside甜度为蔗糖的143倍,rebaudioside A为242倍;纯stevioside每日摄入750 mg对人体血压和胰岛素无显著影响,WHO暂定每日可接受摄入量为0–2 mg/kg体重。研究证实甜菊糖苷合成仅发生在绿色组织,从质体中的kaurene合成到内质网表面的氧化及细胞质中的糖基化形成完整区室化途径,为未来聚焦液泡转运机制及steviolbioside合酶的鉴定指明了方向。
创新点
系统阐明了甜菊糖苷生物合成途径,发现KO定位于内质网而非叶绿体,UGT定位于细胞质,并提出代谢通道假说;纠正了KAH蛋白纯化的错误鉴定
研究对象(19)
| 底盘细胞 | 代谢通路 | 基因 | 蛋白 | 功能 | 说明 |
|---|---|---|---|---|---|
| E. coli MC4100 (dxs::CAT) | MEP途径 | DXS | DXS (1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate synthase) | 催化 | 催化丙酮酸和甘油醛-3-磷酸生成DXP,互补实验验证功能 |
| E. coli MC4100 (dxr::TET) | MEP途径 | DXR | DXR (1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate reductoisomerase) | 催化 | 催化DXP还原重排为MEP,互补实验验证功能 |
| Stevia rebaudiana | MEP途径 | CMS | CMS (4-diphosphocytidyl-2-C-methyl-D-erythritol synthase) | 催化 | 推测功能,序列已提交GenBank |
| Stevia rebaudiana | MEP途径 | CMK | CMK (4-diphosphocytidyl-2-C-methyl-D-erythritol kinase) | 催化 | 推测功能,序列已提交GenBank |
| Stevia rebaudiana | MEP途径 | MCS | MCS (4-diphosphocytidyl-2-C-methyl-D-erythritol 2,4-cyclodiphosphate synthase) | 催化 | 推测功能,序列已提交GenBank |
| Stevia rebaudiana | MEP途径 | HDS | HDS (1-hydroxy-2-methyl-2(E)-butenyl 4-diphosphate synthase) | 催化 | 推测功能,序列已提交GenBank |
| Stevia rebaudiana | MEP途径 | HDR | HDR (1-hydroxy-2-methyl-2(E)-butenyl 4-diphosphate reductase) | 催化 | 推测功能,序列已提交GenBank |
| Stevia rebaudiana | 二萜前体合成 | GGDPS | GGDPS (geranylgeranyl diphosphate synthase) | 催化 | 推测功能,催化IPP和DMAPP缩合生成GGDP |
| Stevia rebaudiana | 二萜环化 | CDPS | CDPS (copalyl diphosphate synthase) | 催化 | 催化GGDP质子化环化生成CDP,在叶片实质细胞中表达 |
| Stevia rebaudiana | 二萜环化 | KS | KS (kaurene synthase) | 催化 | 催化CDP电离环化生成kaurene,在叶片实质细胞中表达 |
| Saccharomyces cerevisiae WAT21 | 甜菊醇合成 | KO | KO (kaurene oxidase, CYP701A5) | 催化 | P450单加氧酶,三步氧化kaurene生成kaurenoic acid,定位于内质网 |
| Saccharomyces cerevisiae WAT21 | 甜菊醇合成 | KAH | KAH (kaurenoic acid 13-hydroxylase) | 催化 | P450酶,催化kaurenoic acid羟基化生成steviol,是途径的第一个特异性步骤;基因序列未正式发表 |
| E. coli | 甜菊糖苷糖基化 | UGT85C2 | UGT85C2 (UDP-glycosyltransferase) | 催化 | 催化steviol C13-羟基糖基化生成steviolmonoside,定位在细胞质 |
| E. coli | 甜菊糖苷糖基化 | UGT74G1 | UGT74G1 (UDP-glycosyltransferase) | 催化 | 催化steviolbioside C19-羧基糖基化生成stevioside,定位在细胞质 |
| E. coli | 甜菊糖苷糖基化 | UGT76G1 | UGT76G1 (UDP-glycosyltransferase) | 催化 | 催化stevioside C13-葡萄糖C3'糖基化生成rebaudioside A,定位在细胞质 |
| Stevia rebaudiana | 甜菊糖苷糖基化 | 未鉴定UGT | 推测为steviolbioside合酶 | 催化 | 负责将steviolmonoside C13-葡萄糖C2'糖基化生成steviolbioside,尚未克隆 |
| Stevia rebaudiana | 液泡转运 | MFS转运蛋白候选 | Major Facilitator超家族转运蛋白 | 转运 | 候选基因,可能参与甜菊糖苷液泡转运,功能验证中 |
| Stevia rebaudiana | 液泡转运 | MATE转运蛋白候选 | Multidrug and Toxic Compound Extrusion家族转运蛋白 | 转运 | 候选基因,可能参与甜菊糖苷液泡转运,功能验证中 |
| Stevia rebaudiana | 液泡转运 | ABC转运蛋白候选 | ATP Binding Cassette超家族转运蛋白 | 转运 | 候选基因,可能参与甜菊糖苷液泡转运,功能验证中 |
关键发现
- 甜菊糖苷甜度分别为stevioside 143倍、rebaudioside A 242倍于蔗糖
- Stevia中GA浓度约1.2 μg/kg鲜重
- 纯stevioside 750 mg/day对人体血压和胰岛素无影响
- WHO暂定甜菊糖苷每日可接受摄入量0-2 mg/kg体重
- 克隆并功能验证了DXS、DXR、CDPS、KS、KO、UGT85C2、UGT74G1、UGT76G1
- KO定位于内质网,三个UGT定位于细胞质
- 一个未鉴定的UGT负责steviolbioside合成,另有MFS/MATE/ABC转运蛋白候选
研究结论
甜菊糖苷合成仅发生在绿色组织,所有步骤至kaurene在质体中进行,氧化步骤位于内质网表面,糖基化在细胞质中进行;未来的工作应聚焦于液泡转运机制和唯一缺失酶(steviolbioside合酶)的鉴定