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Site-directed mutagenesis of the amino acid residues in β-strand III [Val30-Val36] of D-amino acid aminotransferase of Bacillus sp. YM-1

作者
Hyeon-Su Ro, Seung-Pyo Hong, Hwa-Jung Seo, Tohru Yoshimura, Nobuyoshi Esaki, Kenji Soda, Hak-Sung Kim, Moon-Hee Sung
单位
Department of Biological Sciences, Korea Advanced Institute of Science and Technology, 373-1 Kusong-dong, Yusong-gu, Taejon 305-701, South Korea; Microbial Conversion Research Unit, Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology, Yusong-gu, Taejon 305-600, South Korea; Institute for Chemical Research, Kyoto University, Uji, Kyoto 611, Japan
杂志
FEBS Letters(1996)
DOI
10.1016/S0014-5793(96)01222-7
所属领域
酶工程
关键词
D-Amino acid aminotransferasePyridoxal 5'-phosphateSite-directed mutagenesisSubstituted aldiminepH titration
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解决的核心问题

阐明Bacillus sp. YM-1中D-氨基酸氨基转移酶β-折叠片III(Val30-Val36)各氨基酸残基在催化中的作用,特别是Glu32和Lys35的功能

研究策略

采用丙氨酸扫描诱变对β-strand III残基进行逐一替换,通过动力学参数和光谱学分析(pH依赖吸收光谱、荧光光谱)评估突变酶活性变化,并对关键残基Glu32进行保守替换(E32D、E32Q)进一步研究其电荷作用

研究路线图

100%
研究问题
β-strand III残基
在D-AAT催化中的功能
研究策略
丙氨酸扫描诱变
+ 保守替换
关键改造
E32D / E32Q / E32A
(Glu32电荷功能)
关键改造
Y31A / V33A / K35A
(其他朝向活性位点残基)
动力学分析结果
kcat与Km显著变化
(E32A 1%活性等)
光谱学分析结果
pH依赖吸收谱揭示
席夫碱质子化状态
结论
Tyr31/Glu32/Lys35对
催化至关重要的机制
筛选策略
突变体构建
突变体构建
酶学评估
光谱检测
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核心内容

该研究通过丙氨酸扫描诱变系统考察了Bacillus sp. YM-1来源的D-氨基酸氨基转移酶β-折叠片III(Val30-Val36)各残基的催化功能。结果显示,Tyr31和Glu32是催化活性的关键残基,二者突变体的kcat分别降至0.5和1.3 s⁻¹,不足野生型(131.2 s⁻¹)的1%。Lys35则主要通过静电作用参与α-酮戊二酸侧链羧基的识别,其突变体对该底物的Km升高至35.6 mM,远超野生型的2.5 mM。对Glu32的保守替换进一步揭示其作用机制:E32Q仅保留约10%活性,而E32D可恢复65%活性,结合pH依赖吸收光谱分析,表明Glu32的负电荷通过稳定Lys145-PLP内部醛亚胺的质子化状态来维持催化构象,其功能类似于天冬氨酸转氨酶中的Tyr70。该工作首次系统阐明了β-strand III中朝向活性位点残基的贡献,为理解D-氨基酸氨基转移酶的底物识别与催化机制提供了分子层面的依据。

创新点

首次系统研究β-strand III中朝向活性位点的残基(Tyr31、Glu32、Val33、Lys35)的催化贡献;发现Glu32通过负电荷稳定Lys145-PLP席夫碱的质子化状态,类似天冬氨酸转氨酶的Tyr70;发现Lys35通过静电相互作用识别α-酮戊二酸的侧链羧基

研究对象(8)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Bacillus sp. YM-1 D-氨基酸转氨代谢(D-谷氨酸合成) D-氨基酸氨基转移酶基因 D-氨基酸氨基转移酶 (D-AAT) 催化 野生型酶来源,β-strand III由Val30-Val36组成,Tyr31、Glu32、Val33、Lys35朝向活性位点
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 野生型D-AAT基因(pTrc99A载体) 野生型D-AAT 催化 异源表达野生型,kcat=131.2 s^-1,Km(α-酮戊二酸)=2.5 mM,Km(D-丙氨酸)=2.1 mM
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 Y31A突变D-AAT基因 D-AAT Y31A 催化 kcat=0.5 s^-1,Km(α-酮戊二酸)=10.1 mM,活性低于野生型1%
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 E32A突变D-AAT基因 D-AAT E32A 催化 kcat=1.3 s^-1,Km(α-酮戊二酸)=1.8 mM,活性约1%
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 E32Q突变D-AAT基因 D-AAT E32Q 催化 kcat=13.4 s^-1,保留10%活性
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 E32D突变D-AAT基因 D-AAT E32D 催化 kcat=85.6 s^-1,恢复65%活性
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 V33A突变D-AAT基因 D-AAT V33A 催化 kcat=145.1 s^-1,Km(α-酮异戊酸)=15.5 mM,较野生型28.8 mM降低,对支链底物亲和力增加
Escherichia coli XL1 Blue D-氨基酸转氨代谢 K35A突变D-AAT基因 D-AAT K35A 催化 kcat=84.3 s^-1,Km(α-酮戊二酸)=35.6 mM(野生型2.5 mM),表明Lys35与α-酮戊二酸负电荷静电相互作用

关键发现

  1. 丙氨酸扫描显示Y31A和E32A的kcat分别降至0.5 s^-1和1.3 s^-1,均小于野生型(131.2 s^-1)的1%
  2. K35A对α-酮戊二酸的Km升至35.6 mM(野生型2.5 mM),而V33A对α-酮异戊酸的Km降至15.5 mM(野生型28.8 mM)
  3. Glu32替换为Gln保留10%活性(kcat=13.4 s^-1),替换为Asp恢复65%活性(kcat=85.6 s^-1)
  4. 荧光光谱表明335 nm吸收带对应取代醛亚胺结构,375 nm增加对应非质子化内醛亚胺
  5. E32A/E32Q在pH 8.5即出现375 nm吸收增加,而野生型需更高pH,说明Glu32负电荷提高席夫碱亚胺氮的pKa。

研究结论

β-strand III中的Tyr31、Glu32和Lys35对D-AAT催化至关重要:Tyr31通过氢键稳定PLP,Glu32通过负电荷稳定Lys145-PLP内部醛亚胺的质子化状态,Lys35与α-酮戊二酸的侧链羧基形成静电相互作用辅助底物结合;Glu32的功能类似于天冬氨酸转氨酶的Tyr70。