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Cloning, Solubilization, and Characterization of Squalene Synthase from Thermosynechococcus elongatus BP-1

作者
Sungwon Lee, C. Dale Poulter
单位
Department of Chemistry, University of Utah, 315 South 1400 East, Salt Lake City, Utah 84112
杂志
Journal of Bacteriology(2008)
DOI
10.1128/JB.01939-07
所属领域
代谢工程
关键词
可溶化嗜热蓝藻法尼基焦磷酸藿烷生物合成角鲨烯合酶酶动力学
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解决的核心问题

从产藿烷的嗜热蓝藻 Thermosynechococcus elongatus BP-1 中获得可溶、有活性的细菌角鲨烯合酶(SQS),并对其进行克隆、纯化和生化表征,以填补细菌 SQS 研究的空白。

研究策略

将 T. elongatus BP-1 的 SQS 基因(tll1096)克隆进 pET28b(+) 载体,在大肠杆菌 Rosetta(DE3) 中表达 His6 标签融合蛋白;通过对裂解和纯化缓冲液添加 20%~50% 甘油、降低表达温度至 30°C 等优化,获得可溶性活性酶;再经 Ni-NTA 亲和纯化后进行酶学表征。同时尝试了 B. japonicum 和 Z. mobilis 的 SQS 可溶表达但未成功。

研究路线图

100%
细菌角鲨烯合酶(SQS)研究空白
克隆tll1096基因至pET28b(+)
高浓度甘油(20%~50%)+30°C低温表达
Ni-NTA纯化:纯度>97%,42kDa
酶学表征:底物/辅因子/动力学
Km(FPP)=0.97μM,kcat=1.74s⁻¹
Zaragozic acid A 抑制(IC₅₀=95.5nM)
B.japonicum和Z.mobilis表达失败
结论:细菌SQS工具酶,无C端跨膜锚定
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核心内容

该研究首次从产藿烷的嗜热蓝藻Thermosynechococcus elongatus BP-1中克隆并表达了细菌来源的角鲨烯合酶(SQS),填补了细菌SQS生化表征的空白。作者将tll1096基因克隆至pET28b(+)载体,在大肠杆菌Rosetta(DE3)中表达His6标签融合蛋白。由于该酶表达时主要形成包涵体,通过在裂解和纯化缓冲液中添加20%至50%甘油并降低表达温度至30°C,成功获得可溶性活性酶,占胞质总蛋白约3%至6%,纯化后纯度超过97%。 纯化后的SQS以法尼基焦磷酸(FPP)和NADPH为底物生成角鲨烯,无NADPH时生成前角鲨烯焦磷酸(PSPP)。该酶依赖Mg²⁺,最适pH为7.6,最适温度为60°C,动力学参数为Km(FPP)=0.97 μM,kcat=1.74 s⁻¹,可被zaragozic acid A有效抑制(IC50=95.5 nM)。序列分析显示该酶与真核SQS约30%相似,但缺乏真核酶的C端跨膜锚定螺旋。这项工作为研究细菌藿烷生物合成提供了关键工具,其高甘油可溶化策略也为其他难溶膜相关酶的表达提供了借鉴。

创新点

首次报道细菌源 SQS(来自 T. elongatus BP-1)的可溶性重组表达与纯化;发现高浓度甘油是实现该酶可溶化的关键,且蛋白一旦可溶化后无需甘油也能保持活性;系统比较了细菌 SQS 与真核 SQS 的序列和动力学性质。

研究对象(5)

底盘细胞代谢通路基因蛋白功能说明
Thermosynechococcus elongatus BP-1 藿烷生物合成 tll1096 squalene synthase (SQS) 催化 天然来源,SQS 催化两分子 FPP 缩合生成 PSPP,再经 NADPH 依赖的重排还原生成角鲨烯。
Escherichia coli Rosetta(DE3) 藿烷/甾醇生物合成(异源表达) tll1096 His6-tagged T. elongatus SQS 催化 重组表达获得可溶性活性酶,需在裂解和纯化缓冲液中添加 20%~50% 甘油。
Bradyrhizobium japonicum USDA 110 藿烷生物合成 blr3001(长版)及短版 SQS 基因 squalene synthase (SQS) 催化 克隆到大肠杆菌表达系统,但未能获得可溶性活性蛋白。
Zymomonas mobilis ZM4 藿烷生物合成 zmo0869 squalene synthase (SQS) 催化 克隆到大肠杆菌表达系统,但未能获得可溶性活性蛋白。
Escherichia coli 类异戊二烯前体生物合成 farnesyl diphosphate synthase (FPP synthase) 催化 重组 E. coli FPP synthase 用于从 [14C]IPP 和 GPP 合成 [14C]FPP,以检测 PSPP 的形成。

关键发现

  1. 重组 T. elongatus BP-1 SQS 在大肠杆菌中表达时主要形成包涵体,通过在裂解/纯化缓冲液中加入 20%~50% 甘油并降低表达温度至 30°C,获得占胞质总蛋白约 3%~6% 的可溶性活性酶
  2. 纯化后蛋白纯度 >97%,SDS-PAGE 表观分子量约 42 kDa,ESI-MS 实测 m/z 41886(理论值 41888,去除 N 端 Met)。酶以 FPP 和 NADPH 为底物生成角鲨烯
  3. 无 NADPH 时生成 PSPP。酶需 Mg2+,最适 pH 7.6,最适温度 60°C,Tween 80 最适浓度 2%(vol/vol)。动力学参数:Km(FPP)=0.97±0.10 μM,kcat=1.74±0.04 s^-1,Km(NADPH)=241±13 μM,kcat/Km(FPP)=1.80±0.02 μM^-1 s^-1。Zaragozic acid A 的 IC50=95.5±13.6 nM。B. japonicum 和 Z. mobilis 的 SQS 均未能获得可溶活性蛋白。

研究结论

T. elongatus BP-1 的 tll1096 基因编码角鲨烯合酶,该酶与真核 SQS 约 30% 相似,保守的催化区域 I/II 高度同源,且缺乏真核酶的 C 端跨膜锚定螺旋。通过高浓度甘油缓冲液可实现该细菌 SQS 的可溶化与纯化。其酶学性质(金属离子、pH、动力学常数)与真核 SQS 相似,且可被 zaragozic acid A 有效抑制,表明该酶是研究细菌藿烷合成的重要工具。